Lavage broncho-alvéolaire chez le chien et le chat. Lavage broncho-alvéolaire Technique pour réaliser le BAL
Pour les troubles obstructifs de la ventilation modérés et sévères, il ne suffit pas d'utiliser des bronchodilatateurs et des médicaments favorisant le rejet des bouchons muqueux. Dans certains cas, un nettoyage mécanique de l'arbre bronchique et un lavage visuel ciblé des bronches sont indiqués.
Chaque bronche segmentaire ne peut être lavée que par bronchoscopie. Cela n'est pas possible sous anesthésie locale et les méthodes de ventilation mécanique conventionnelles ne conviennent pas pour réaliser une bronchoscopie sous anesthésie. Nous avons besoin d'une méthode de ventilation mécanique qui non seulement empêchera une augmentation supplémentaire de l'hypoxie et de l'hypercapnie, mais assurera également un échange gazeux optimal, malgré la réalisation simultanée d'interventions endobronchiques à travers la lumière du bronchoscope. Cette méthode de ventilation a été proposée par Sanders (1967). C’est en utilisant cette méthode d’injection qu’un rinçage séquentiel et approfondi de tous les segments est possible. Dans le cas où un tube Carlens à double lumière est utilisé, de telles conditions ne sont pas réalisables ; le lavage est effectué à l'aveugle et de manière incontrôlée.
La véritable introduction du lavage bronchique en clinique est associée à la proposition de Thompson et Pryor (1964, 1966). Pour débloquer les petites et moyennes bronches, Tpotrzop, sous bronchoscopie sous anesthésie, a cathétérisé les bronches segmentaires une à une, en y injectant 50 ml de liquide sous pression et en l'aspirant immédiatement par le même cathéter. L'injection de liquide permettait d'éliminer mécaniquement les caillots des bronches. L'ensemble du lavage a nécessité 800 à 1 500 ml, un tiers a pu être aspiré et le reste a été absorbé. Thompson a utilisé une solution saline et ajouté du bicarbonate de sodium, des enzymes protéolytiques et des détergents pour normaliser le pH. L'état le plus grave des patients, selon Thompson et al (1966), ne constitue pas une contre-indication au lavage bronchique, puisque les meilleurs résultats sont obtenus chez des patients presque mourants. Notre propre expérience avec l'utilisation de la modification du lavage bronchique confirme pleinement l'évaluation positive d'une telle aide bronchologique. Cependant, les techniques de bronchoscopie de routine, même celles utilisant des bronchoscopes respiratoires, ne fournissent pas de conditions fiables. Le principal inconvénient est que pour le lavage segmentaire des bronches, une dépressurisation répétée du circuit respiratoire est nécessaire en raison de l'ouverture de la fenêtre de visualisation du bronchoscope. En cas d'état asthmatique et de coma hypoxique, toute pause dans la ventilation mécanique est inacceptable. Il est difficile de ventiler les patients en état de mal asthmatique en créant une pression inspiratoire élevée à l'aide d'un bronchoscope respiratoire. La recherche effectuée dans notre clinique nous a permis de choisir une option qui préserve pleinement tous les avantages de la proposition originale de Thompson, mais dans des conditions de ventilation mécanique continue et efficace, y compris des périodes de dépressurisation à long terme du patient-bronchoscope-appareil. système. Le défi de cette méthode est d’éviter les fuites de gaz par la fenêtre de visualisation ouverte du bronchoscope. La proposition de Sanders impliquait la création d'un flux d'oxygène dirigé dans le tube du bronchoscope (Fig. 11). Pour ce faire, de l’oxygène est injecté via une aiguille d’injection intégrée dans la partie proximale du tube. La résistance d'une aiguille fine est élevée, donc, afin de créer un flux d'oxygène suffisamment puissant, capable d'augmenter la pression intratrachéale de plusieurs dizaines de centimètres de colonne d'eau, il faut créer une pression de plusieurs atmosphères à l'entrée de l'injection aiguille. Le tube du bronchoscope fait office de diffuseur. Le flux de gaz injecté va non seulement vers les poumons, mais entraîne également de l'air avec lui (injection), ainsi lors de l'inhalation non seulement il n'y a pas de fuite d'oxygène, mais au contraire, l'air atmosphérique est aspiré et dilue le mélange respiratoire. Le flux d'oxygène est périodiquement interrompu, puis une expiration passive dans l'atmosphère se produit.  Riz. 11. Direction du flux de gaz pendant la méthode d'injection de ventilation artificielle des poumons pendant la bronchoscopie : 1-apport d'oxygène par l'aiguille d'injection du tube bronchoscopique ; 2-prise d'air de l'atmosphère ; 3 tubes de bronchoscope ; espace à 4 voix ; 5-trachée.
L'ingénieur L.B. Taflinsky et moi avons conçu un bronchoscope à injection spécial et un respirateur à injection automatique avec phases de commutation temporelle. La méthode modifiée de ventilation par injection utilisée prévoit une mesure obligatoire de la pression intratrachéale, ainsi qu'un dispositif de blocage qui empêche une augmentation excessive de la pression, un réglage séparé de la durée de l'inspiration et de l'expiration et une protection du visage du bronchologue contre l'air expiré par le patient. La ventilation par injection est effectuée "manuellement" en bloquant le flux d'alimentation en oxygène, pour lequel le tuyau d'oxygène est pincé, ou un interrupteur à bascule pneumatique intégré au tuyau est utilisé - un interrupteur ou un respirateur spécial. Lors de l'utilisation de cette méthode, les manipulations endoscopiques n'ont pratiquement aucun effet sur les paramètres de la ventilation mécanique et le bronchologue est capable de travailler en permanence avec la fenêtre de visualisation du bronchoscope constamment ouverte. Pendant l'inspiration, la pression intratrachéale peut être augmentée jusqu'à 15 à 40 cm d'eau. Art., bien qu'il soit possible d'obtenir une pression plus élevée. Plus l'état du patient est grave en raison de l'état de mal asthmatique, plus la pression doit être élevée pendant l'inspiration. Le taux respiratoire est de 10 à 15 par minute. La teneur en oxygène du mélange inhalé doit être régulée : dans les cas extrêmes de troubles de la ventilation-obstruction, une ventilation avec de l'oxygène pur humidifié est nécessaire ; chez les autres patients, la teneur en oxygène du mélange inhalé peut être réduite à 50-70 % (Fig. 12). 
Riz. 12. Gaz du sang lors d'un lavage bronchique dans des conditions de ventilation par injection. A - initiale ; B - avant l'intubation et pendant la ventilation avec de l'O 2 pur ; B - après 5 minutes, ingénieur. ventilation avec un masque; G - après 10 minutes, ingénieur. ventilation mécanique; D - après 15 minutes de ventilation mécanique ; E -immédiatement après la fin de la bronchoscopie et de l'extubation Pendant la ventilation par injection, la pO2 du sang artériel augmente immédiatement de manière significative et l'hypercapnie diminue. Au moment de l'insertion du bronchoscope, une hypertension artérielle survient souvent, mais pendant la bronchoscopie, il existe une tendance à la normalisation de la pression artérielle et l'arythmie cardiaque préexistante disparaît souvent. La bronchoscopie et le lavage doivent être effectués sous anesthésie intraveineuse aux barbituriques avec des relaxants, en introduisant parfois en plus du seduxen. Si la composante bronchospastique est prononcée et que l’inhalation préliminaire de ftorotan atténue l’état du patient, alors chez ces patients, le ftorotan doit être utilisé pour l’induction de l’anesthésie et son entretien. L'extubation doit être effectuée après l'apparition des premiers signes de récupération respiratoire. Pour le lavage bronchique, 15 à 25 minutes suffisent. Les bronches doivent être lavées avec une solution saline tiède ou une solution de furagin-K mélangée à une solution saline. Généralement, jusqu'à 800 ml de liquide sont consommés ; environ un tiers du liquide peut être aspiré. Dans certains cas, le liquide est absorbé si rapidement que son retour est insignifiant. En règle générale, un grand nombre de petits caillots blancs en forme de boudin, sous forme de cylindres bronchiques, sont éliminés avec les eaux de lavage (Fig. 13). La libération de liquide par les poumons se poursuit parfois le premier jour après le lavage, atténuant ainsi la toux et l'écoulement des crachats. 
Riz. 13. Moulages des bronches, lavés lors du lavage bronchoscopique endobronchique Pour soulager l’état de mal asthmatique, un, ou moins souvent deux, rinçages sont nécessaires. Les patients constatent le plus grand soulagement quelques heures après la fin de l'intervention. Pour consolider les résultats positifs du traitement, un lavage répété doit être effectué à des moments différents. Le recours au lavage bronchique permet de réduire la dose d'hormones chez les patients qui y sont habitués, et chez certains patients d'abandonner l'utilisation de stéroïdes. Une diminution de la résistance aux bronchodilatateurs a également été notée. Actuellement, le lavage bronchique, à savoir le lavage segmentaire, le lavage ciblé des petites bronches obstruées avec du liquide sous pression, et non le « rinçage aléatoire », sont indispensables pour le traitement des patients atteints de formes sévères d'asthme bronchique et d'état de mal asthmatique.
Une méthode de recherche qui prévoit l'extraction d'éléments cellulaires, de protéines et d'autres substances de la surface des plus petites bronches et alvéoles en remplissant un sous-segment du poumon avec une solution isotonique suivi d'une aspiration. Un lavage broncho-alvéolaire sous-segmentaire diagnostique est généralement réalisé lors d'une bronchofibroscopie sous anesthésie locale après avoir amené le bronchofibroscope à l'embouchure de la bronche sous-segmentaire. 50 à 60 ml de solution isotonique sont instillés dans la bronche sous-segmentaire par le canal du bronchofiberscope. Le liquide provenant de la lumière bronchique, qui est un lavage broncho-alvéolaire, est aspiré par le canal du bronchofiberscope dans un gobelet en plastique. L'instillation et l'aspiration sont répétées 2 à 3 fois. Dans le liquide aspiré, débarrassé du mucus par filtration sur gaze, la composition cellulaire et protéique et l'activité fonctionnelle des macrophages alvéolaires sont étudiées. Pour étudier la composition cellulaire, le lavage broncho-alvéolaire est centrifugé. Les frottis sont préparés à partir du sédiment et colorés à l'hématoxyline-éosine ou au Romanovsky. Le lavage broncho-alvéolaire diagnostique est plus souvent utilisé pour déterminer l'activité des processus disséminés dans les poumons. Un signe d'activité élevée de l'alvéolite fibrosante idiopathique est une augmentation significative du nombre de neutrophiles dans le lavage broncho-alvéolaire, ainsi que dans la sarcoïdose et l'alvéolite allergique exogène - une augmentation du nombre de lymphocytes.
LAVAGE MÉDICAL BRONCHALVÉOLAIRE
Méthode de traitement des maladies pulmonaires basée sur l'administration endobronchique d'une grande quantité de solution isotonique et l'élimination des caillots de mucus, de protéines et d'autres contenus des petites bronches et des alvéoles. Le lavage broncho-alvéolaire thérapeutique peut être effectué à l'aide d'un bronchoscope ou d'une sonde endotrachéale à double lumière. La procédure est généralement réalisée sous anesthésie. La ventilation artificielle des poumons est réalisée par injection. Une solution isotonique est séquentiellement instillée dans chaque bronche lobaire ou segmentaire via un cathéter contrôlé et immédiatement aspirée avec la sécrétion visqueuse lavée et les caillots de mucus. La technique bronchoscopique est plus souvent utilisée chez les patients souffrant d'asthme bronchique en état de mal asthmatique. Pour laver les bronches, on utilise 500-1500 ml de solution isotonique. Il est généralement possible d’aspirer environ 1/3 à 1/2 du volume de liquide injecté. Les indications d'un lavage broncho-alvéolaire thérapeutique chez les patients souffrant d'asthme bronchique surviennent rarement, car un ensemble d'autres mesures thérapeutiques aide généralement à soulager l'état de mal asthmatique.
Un lavage broncho-alvéolaire thérapeutique à travers une sonde endotrachéale à double lumière est réalisé avec une ventilation artificielle uni-poumon. Un cathéter est inséré dans la lumière de la sonde endotrachéale dans la bronche principale, à travers laquelle sont effectuées l'instillation et l'aspiration d'une solution isotonique. 1 000 à 1 500 ml de solution sont injectés dans les poumons en une seule fois et 90 à 95 % du volume de liquide injecté est aspiré. La procédure est répétée plusieurs fois. Le volume total de liquide injecté varie de 3 à 5 à 40 litres. Le lavage broncho-alvéolaire total au moyen d'une sonde endotrachéale à double lumière est le traitement le plus efficace de la protéinose alvéolaire idiopathique.
Annuaireen pneumologie / Ed. N. V. Putova, G. B. Fedoseeva, A. G. Khomenko - L. : Médecine.
Lésion pulmonaire
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Expectorations- écoulement pathologique des poumons et des voies respiratoires
(bronches, trachée, larynx). L'analyse clinique des crachats comprend une description de leur nature, de leurs propriétés générales et d'un examen microscopique.
Quantité
expectorations varie généralement de 10 à 100 ml par jour. Peu d'expectorations sont libérées lors d'une bronchite aiguë, d'une pneumonie, d'une congestion pulmonaire, au début d'une crise d'asthme bronchique. A la fin d'une crise d'asthme bronchique, la quantité d'expectorations produites augmente. Une grande quantité d'expectorations (parfois jusqu'à 0,5 l) peut être libérée lors d'un œdème pulmonaire, ainsi que lors de processus suppuratifs dans les poumons, à condition que la cavité communique avec la bronche (avec un abcès, une bronchectasie, une gangrène du poumon, avec un processus tuberculeux dans les poumons, accompagné d'une désintégration des tissus) . Il convient de garder à l'esprit qu'une diminution de la quantité d'expectorations au cours des processus suppuratifs dans les poumons peut être soit une conséquence de l'apaisement du processus inflammatoire, soit le résultat d'un drainage altéré de la cavité purulente, qui s'accompagne souvent d'un détérioration de l'état du patient. Une augmentation de la quantité d'expectorations peut être considérée comme un signe de détérioration de l'état du patient si elle dépend d'une exacerbation, par exemple d'un processus suppuratif ; dans d'autres cas, lorsqu'une augmentation de la quantité d'expectorations est associée à un meilleur drainage de la cavité, elle est considérée comme un symptôme positif.
Couleur des crachats. Le plus souvent, les crachats sont incolores ; l'ajout d'un composant purulent leur donne teinte verdâtre, ce qui est observé dans les abcès pulmonaires, la gangrène pulmonaire, les bronchectasies, l'actinomycose pulmonaire. Crachats de couleur rouille(pour la pneumonie lobaire, focale et grippale, pour la tuberculose pulmonaire avec désintégration ringarde, la congestion pulmonaire, l'œdème pulmonaire, pour le charbon pulmonaire) ou crachats bruns(avec un infarctus pulmonaire) indique qu'il ne contient pas de sang frais, mais ses produits de dégradation (hématine). Les crachats libérés au cours de divers processus pathologiques dans les poumons, associés à la présence d'un ictère chez les patients, peuvent avoir une couleur vert sale ou jaune-vert.
Crachats noirâtres ou grisâtres Cela se produit lorsqu'il y a un mélange de poussière de charbon et chez les fumeurs.
Certains médicaments peuvent tacher les crachats ; par exemple, la rifampicine rend les écoulements rouges.
Odeur. Les crachats sont généralement inodores. Il acquiert une odeur putride avec un abcès, une gangrène du poumon, avec une bronchite putréfactive suite à l'ajout d'une infection putréfactive, une bronchectasie, un cancer du poumon compliqué de nécrose. Un kyste hydatique ouvert se caractérise par une odeur fruitée particulière d'expectorations.
Superposition d'expectorations. En position debout, les crachats purulents sont généralement divisés en 2 couches, les crachats putréfiants en 3 couches (supérieure mousseuse, moyenne séreuse, inférieure purulente). L'apparition d'expectorations à trois couches est particulièrement caractéristique de la gangrène pulmonaire, tandis que l'apparition d'expectorations à deux couches est généralement observée avec un abcès pulmonaire et une bronchectasie.
Réaction. Les crachats sont généralement alcalins ou neutres. Les crachats décomposés deviennent acides.
Caractère des crachats :
■ Des crachats muqueux sont libérés en cas de bronchite aiguë et chronique,
bronchite asthmatique, trachéite.
■ Les crachats mucopurulents sont caractéristiques d'un abcès et d'une gangrène du poumon, d'une bronchite purulente, d'une exacerbation d'une bronchite chronique, d'une pneumonie à staphylocoques.
■ Les crachats purulents et muqueux sont caractéristiques de la bronchopneumonie.
■ Des crachats purulents sont possibles avec bronchectasie, pneumonie staphylococcique, abcès, gangrène, actinomycose pulmonaire.
■ Des crachats séreux sont libérés lors d'un œdème pulmonaire.
■ Des crachats séreux-purulents sont possibles en cas d'abcès pulmonaire.
■ Des crachats sanglants sont libérés lors d'un infarctus pulmonaire, de néoplasmes, de pneumonie (parfois), de lésions pulmonaires, d'actinomycose et de syphilis.
Examen microscopique :
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Macrophages alvéolaires- les cellules d'origine réticulohistiocytaire. Un grand nombre de macrophages dans les crachats sont détectés dans les processus chroniques et au stade de la résolution des processus aigus
dans le système broncho-pulmonaire. Macrophages alvéolaires contenant de l'hémosidérine (« cellules de malformations cardiaques »), détecté lors d'une crise cardiaque
poumon, hémorragie, stagnation de la circulation pulmonaire. Les macrophages contenant des gouttelettes lipidiques sont le signe d'un processus obstructif au niveau des bronches et des bronchioles.
■ Cellules épithéliales ciliées colonnaires- les cellules de la muqueuse du larynx, de la trachée et des bronches ; on les retrouve dans la bronchite, la trachéite, l'asthme bronchique et les tumeurs malignes des poumons.
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Leucocytes sont présents en quantités variables dans les crachats. Un grand nombre de neutrophiles sont détectés dans les crachats mucopurulents et purulents. Les crachats sont riches en éosinophiles dans l'asthme bronchique, la pneumonie à éosinophiles, les lésions helminthiques des poumons et l'infarctus pulmonaire. Les éosinophiles peuvent apparaître dans les crachats de tuberculose et de cancer du poumon. Les lymphocytes sont présents en grand nombre dans la coqueluche et, plus rarement, dans la tuberculose.
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Globules rouges. La détection de globules rouges uniques dans les crachats n’a aucune valeur diagnostique. S'il y a du sang frais dans les crachats, les érythrocytes inchangés sont déterminés, mais si le sang qui est resté longtemps dans les voies respiratoires est éliminé avec les crachats, les érythrocytes lessivés sont détectés.
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Fibres élastiques apparaissent lors de la dégradation du tissu pulmonaire, qui s'accompagne de la destruction de la couche épithéliale et de la libération de fibres élastiques ; on les retrouve dans la tuberculose, les abcès, l'échinococcose et les tumeurs des poumons.
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Fibres de corail détecté dans les maladies pulmonaires chroniques, telles que la tuberculose caverneuse.
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Fibres élastiques calcifiées- des fibres élastiques imprégnées de sels de calcium, caractéristiques de la désintégration de la pétrification tuberculeuse.
■ Spirales Kurshman se forment en raison de l'état spastique des bronches et de la présence de mucus dans celles-ci et apparaissent avec l'asthme bronchique, la bronchite, les tumeurs pulmonaires qui compriment les bronches.
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Cristaux de Charcot−Leyde- produits de désintégration des éosinophiles, caractéristiques de l'asthme bronchique, des affections allergiques, des infiltrats éosinophiles dans les poumons.
■ Les bouchons de Dietrich- des grumeaux gris jaunâtre avec une odeur désagréable. Ils sont constitués de détritus, de bactéries, d’acides gras et de gouttelettes de graisse. Ils sont caractéristiques des abcès pulmonaires et des bronchectasies.
Examen bactérioscopique des crachats :
L'identification rapide de l'agent pathogène infectieux est très importante pour le choix correct du médicament antibactérien afin de prévenir le développement d'une résistance bactérienne lors de la prescription empirique d'un antibiotique.
Par bactérioscopie d'un frottis d'expectoration coloré au Gram,
procéder à une évaluation préliminaire de l'agent étiologique éventuel. Un frottis d'expectoration coloré au Gram est examiné avant de l'inoculer sur un milieu nutritif, également afin d'évaluer l'aptitude à la culture et d'identifier l'agent pathogène probable. Les signes d'un échantillon d'expectorations de haute qualité pouvant être utilisé pour la culture sont la prédominance des leucocytes sur les cellules épithéliales, ainsi que la présence de bactéries de la même espèce situées dans ou autour des leucocytes. Les agents responsables de la pneumonie atypique (mycoplasmes, légionelles, rickettsies et chlamydia) ne se colorent pas avec Gram, c'est pourquoi les méthodes sérologiques sont principalement utilisées pour les identifier.
La coloration Ziehl-Neelsen des frottis d'expectoration est utilisée pour identifier les bacilles acido-résistants, principalement Mycobacterium tuberculosis. La détection de Mycobacterium tuberculosis est le signe le plus fiable de tuberculose pulmonaire. La méthode de coloration des frottis de Ziehl-Neelsen pour les formes actives de tuberculose pulmonaire a une sensibilité de 50 % et une spécificité de 80 à 85 %.
Lavage broncho-alvéolaire- un acte médical diagnostique et thérapeutique impliquant l'introduction d'une solution neutre dans les bronches et les poumons, son retrait ultérieur, l'étude de l'état des voies respiratoires et de la composition du substrat extrait.
Valeur diagnostique :
Elle est de la plus haute importance pour le diagnostic de la sarcoïdose (forme médiastinale sans modifications radiologiques) ; tuberculose disséminée; processus tumoraux métastatiques; l'amiantose; pneumocystose, alvéolite fibrosante exogène allergique et idiopathique ; un certain nombre de maladies rares. Il peut être utilisé avec succès pour clarifier le diagnostic et en cas de processus pathologiques limités dans les poumons (par exemple, tumeurs malignes, tuberculose), ainsi que dans la bronchite chronique et l'asthme bronchique.
– une procédure de diagnostic dont l'essence est l'introduction d'une solution stérile dans les bronches et les poumons d'un animal, son retrait ultérieur, ainsi que l'étude des cellules de l'échantillon obtenu, déterminant la sensibilité du micro-organisme aux antibiotiques .
Un bronchoscope est utilisé pour effectuer des diagnostics, ce qui permet au médecin d'évaluer les voies respiratoires en détail et d'effectuer une analyse de la zone endommagée.
BAL est une procédure thérapeutique. Pour de nombreux animaux, la fonction respiratoire s’améliore considérablement après l’intervention.
La bronchoscopie associée au prélèvement d'écouvillons est souvent utilisée en pratique vétérinaire. La bronchoscopie permet de déterminer le degré d'inflammation, de bronchectasie, d'effondrement des voies respiratoires et de lésions tumorales. Collecte d'écouvillons - évaluez la nature de l'inflammation en fonction de la composition cellulaire du liquide, effectuez une étude microbiologique pour détecter l'agent pathogène.
Caractéristiques diagnostiques, indications, symptômes : efficacité de la méthode
Le liquide est collecté dans les bronches, les bronchioles et les alvéoles du patient. Ainsi, le médecin reçoit des informations détaillées sur le fonctionnement des bronches et des poumons.
La plupart des maladies des voies respiratoires inférieures présentent des symptômes similaires. Le vétérinaire ne peut pas poser un diagnostic précis en se basant uniquement sur un examen physique (examen de l'animal, écoute des poumons). Ensuite, une radiographie des poumons peut révéler une inflammation des bronches et le degré de dommage. Cependant, il n'est pas possible d'établir la nature du processus pathologique grâce à cela.
BAL vous permet de différencier les problèmes allergiques, infectieux et tumoraux. Cette méthode est très informative si une bronchite infectieuse à long terme est observée, car elle vous permet de sélectionner rapidement le médicament approprié qui a l'effet le plus efficace sur l'agent pathogène.
Lavage broncho-alvéolaire chez le chien et d'autres animaux est réalisée à l'aide d'un bronchoscope rigide sous anesthésie générale.
Maladies pour lesquelles le diagnostic présenté est nécessaire :
Les principaux symptômes de l'inflammation des voies respiratoires s'effondrent :
- Toux chronique non productive ;
- Dyspnée;
- Suffocation;
- Cyanose des muqueuses ;
- Intolérance à l’exercice ;
- Léthargie.
Technique BAL : précision du diagnostic
L'étude est réalisée sous anesthésie générale. Le processus prend un peu de temps (environ 10 minutes). La procédure est absolument indolore, même si certains animaux peuvent ressentir une gêne après le prélèvement des écouvillons. Après BAL, le tableau clinique de la maladie s'améliore (la respiration s'améliore, l'intensité de la toux diminue).
Une solution stérile est versée à raison de 0,5 ml pour 1 kg de poids animal. Ensuite, il est rapidement aspiré. Un bon résultat est de récupérer 50 % du volume. La partie restante est absorbée par la membrane muqueuse des voies respiratoires.
Environ 15 minutes après l'intervention, l'animal est soigneusement surveillé pour détecter toute détresse respiratoire et cyanose des muqueuses. L'animal revient rapidement à la normale et est restitué au propriétaire le jour même.
Les résultats des études microbiologiques et cytologiques sont préparés dans un délai de 7 jours ouvrés. Ainsi, BAL est une étude informative qui vous permet de poser un diagnostic précis, ainsi que de sélectionner rapidement un traitement pour votre animal.
La nécessité et la sécurité du BAL : l'approche professionnelle des vétérinaires de la clinique Vysota
Il est important de comprendre qu'une toux chronique progressive prolongée peut indiquer le développement de maladies bronchopulmonaires graves, assez difficiles à traiter.
Par exemple, l’asthme félin présente un risque élevé de décès. Par conséquent, le lavage broncho-alvéolaire chez le chat vous permettra de poser un diagnostic rapide et précis, ainsi que de sélectionner un traitement qui résoudra le problème à un stade précoce et améliorera la qualité de vie de votre animal.
BAL est considéré comme une méthode sûre et efficace pour établir le diagnostic. Cela a un effet cicatrisant. Après la procédure, la toux disparaît pendant une courte période. Nécessite une anesthésie minimale. Il n'y a aucun effet secondaire lors de la préparation.
Etudes microbiologiques et immunologiques de la BS et de l'ALS doit être effectué dans la même mesure que l’examen des crachats et pour des indications similaires. La BS et la SLA acquièrent la plus grande importance diagnostique lors de l'évaluation du niveau d'inflammation de l'arbre trachéobronchique, avec des tumeurs pulmonaires et une protéinose pulmonaire. Actuellement, une étude biochimique et immunologique du surnageant de BS et BAS, ainsi qu'une étude du sédiment cellulaire, sont en cours. Parallèlement, la viabilité des cellules BS et BAL, un cytogramme sont calculés, des études cytochimiques des cellules BAL sont réalisées, ainsi qu'une évaluation cytobactérioscopique. Récemment, une méthode de calcul de la formule macrophage du liquide BAL a été développée pour diverses maladies du système bronchopulmonaire. L'étude du BAL permet d'évaluer l'état du système tensioactif des poumons en mesurant la tension superficielle et en étudiant la composition phospholipidique du surfactant.
Portion bronchique du lavage broncho-alvéolaire utilisé pour des études microbiologiques qualitatives et quantitatives. De plus, les changements dans la composition cellulaire du BS peuvent déterminer la gravité de la réaction inflammatoire dans l'arbre bronchique. Selon les recommandations de la Société européenne des pneumologues, la composition suivante de BS est typique de la norme :
Il n’a une valeur diagnostique élevée que pour certaines maladies pulmonaires. Les maladies interstitielles dans lesquelles l'étude de la composition cellulaire de la SLA peut être utile comprennent l'histiocytose X, dans laquelle des cellules de Langerhans apparaissent avec des corps X caractéristiques dans le cytoplasme, déterminés par examen au microscope électronique (selon l'immunophénotype, il s'agit de cellules CD1+). Grâce au BAS, il est possible de confirmer la présence d'une hémorragie pulmonaire. L'étude de la SLA est indiquée dans le diagnostic de la protéinose alvéolaire, caractérisée par la présence d'une substance extracellulaire bien dosée par microscopie optique (réaction PIR) et électronique. Dans cette maladie, le BAL n'est pas seulement une procédure diagnostique, mais aussi une procédure thérapeutique.
Pour les maladies pulmonaires interstitielles causée par l'inhalation de particules de poussière, le test BAS permet uniquement de confirmer l'exposition à l'agent poussiéreux. Un diagnostic spécifique de la maladie du béryllium peut être réalisé en étudiant l'activité proliférative fonctionnelle des cellules SLA en réponse à l'action des sels de béryllium. Avec l'amiantose, des corps silicatés peuvent être trouvés dans le BAS sous forme de fibres caractéristiques - les corps dits « glandulaires ». Ces corps en amiante sont des fibres d'amiante sur lesquelles sont agrégées de l'hémosidérine, de la ferritine et de la glycoprotéine. Par conséquent, ils se colorent bien lors de la réalisation de la réaction CHIC et de la coloration Perls. Les fibres décrites dans le lavage peuvent être détectées à la fois de manière extracellulaire et intracellulaire. Il est extrêmement rare que des corps contenant de l'amiante puissent être trouvés chez des personnes ayant eu des contacts non professionnels avec de l'amiante, et la concentration de ces particules dans le BAS ne dépassera pas 0,5 ml. Des corps pseudo-amiante, décrits dans les pneumoconioses associées à une exposition au charbon, à l'aluminium, aux fibres de verre, etc., peuvent également être retrouvés dans la SLA.
Lavage broncho-alvéolaire est la méthode de choix lorsqu'il est nécessaire d'obtenir du matériel provenant des parties inférieures des poumons chez des patients immunosuppresseurs. Dans le même temps, l’efficacité de l’étude pour détecter les agents infectieux a été prouvée. Ainsi, la sensibilité du liquide BAL dans le diagnostic de l'infection à Pneumocystis, selon certaines données, dépasse 95 %.
Pour d'autres maladies, tests ALS n'est pas très spécifique, mais peut apporter des informations complémentaires dans un ensemble de données cliniques, radiologiques, fonctionnelles et de laboratoire. Ainsi, en cas d'hémorragie alvéolaire diffuse, des érythrocytes et sidérophages libres et phagocytés peuvent être détectés dans le BAS. Cette condition peut survenir dans diverses maladies ; le BAS est une méthode efficace pour détecter les saignements diffus même en l'absence d'hémoptysie, lorsque le diagnostic de cette maladie est extrêmement difficile. Il convient de rappeler que l'hémorragie alvéolaire diffuse doit être différenciée des lésions alvéolaires diffuses - syndrome de détresse respiratoire de l'adulte, dans lequel des sidérophages apparaissent également dans le lavage.
L'un des plus sérieux problèmes de diagnostic différentiel- diagnostic d'alvéolite fibrosante idiopathique. En résolvant ce problème, l'examen cytologique du BAL permet d'exclure d'autres maladies pulmonaires interstitielles. Ainsi, une augmentation de la proportion de neutrophiles et d'éosinophiles dans la SLA ne contredit pas le diagnostic d'alvéolite idiopathique. Une augmentation significative du nombre de lymphocytes n'est pas typique de cette maladie ; dans ces cas, il faut penser à une alvéolite allergique exogène ou à d'autres alvéolites médicamenteuses ou professionnelles.
Examen cytologique de la SLA est une méthode sensible dans le diagnostic de l’alvéolite allergique exogène. Un pourcentage élevé de lymphocytes, la présence de plasma et de mastocytes, ainsi que de macrophages mousseux, associés aux données anamnestiques et de laboratoire, permettent de diagnostiquer cette nosologie. Il est possible que des éosinophiles ou des cellules multinucléées géantes apparaissent dans la SLA. Parmi les lymphocytes, les cellules d'immunophénotype CD3+/CD8+/CD57+/CD16- prédominent. Il ne faut cependant pas oublier qu'à la phase tardive de la maladie, plusieurs mois après le début de la maladie, en même temps que les suppresseurs, le nombre de cellules T auxiliaires commence à augmenter. D'autres méthodes de recherche permettent d'exclure d'autres maladies dans lesquelles il existe une augmentation des lymphocytes - maladies du collagène, pneumopathie d'origine médicamenteuse, bronchiolite oblitérante avec pneumonie organisée ou silicose.
Pour la sarcoïdose une augmentation de la proportion de lymphocytes a également été constatée, mais il a été montré que le rapport aides/suppresseurs (CD4+/CD8+) supérieur à 4 est caractéristique de cette forme nosologique particulière (la sensibilité de ce signe est, selon différents auteurs, de 55 à 95%, spécificité - jusqu'à 88% ). Dans la SLA des patients atteints de sarcoïdose, on peut également retrouver des cellules géantes multinucléées de type « corps étranger ».
Pour l'alvéolite médicinale des modifications morphologiques des poumons peuvent être variées ; un syndrome hémorragique alvéolaire ou une bronchiolite oblitérante avec pneumonie organisée sont souvent observés. Dans la composition cellulaire de la SLA, on note une augmentation des éosinophiles, des neutrophiles et des lymphocytes, et parfois une augmentation combinée de ces cellules est possible. Cependant, le plus souvent dans les alvéolites médicamenteuses, une augmentation du nombre de lymphocytes est décrite, parmi lesquels prédominent généralement les cellules cytotoxiques suppressives (CD8+). En règle générale, une teneur extrêmement élevée en neutrophiles se produit lors de la prise de l'antidépresseur nomifensine, en particulier au cours des premières 24 heures. Dans ce cas, la proportion de neutrophiles dans le BAS peut atteindre 80 %, suivie d'une diminution dans les 2 jours jusqu'à 2 %. , en même temps la proportion de lymphocytes dans le lavage augmente . Des observations similaires ont été décrites pour les alvéolites allergiques exogènes. Lors de la prise d'amiodarone et du développement d'une alvéolite d'origine médicamenteuse (appelée « poumon à l'amiodarone »), des modifications spécifiques du BAS se produisent, caractérisées par l'apparition d'un grand nombre de macrophages mousseux. Il s'agit d'un signe très sensible, mais peu spécifique : les mêmes macrophages peuvent être retrouvés dans d'autres maladies, notamment les alvéolites allergiques exogènes et les bronchiolites oblitérantes avec pneumonie organisée. Les mêmes macrophages peuvent être retrouvés chez les individus prenant de l'amiodarone, mais sans développement d'alvéolite. Cela est dû au fait que cette substance augmente la teneur en phospholipides, notamment dans les phagocytes.
