Bonjour étudiant. Fabrication sous contrat Action et propriétés pharmacologiques

Les tanins sont des composés phénoliques naturels de haut poids moléculaire largement répandus dans le monde végétal. En termes plus simples, ce sont des substances qui donnent à divers fruits un goût astringent et acidulé.

Selon leur concentration dans une plante particulière, celle-ci aura une astringence plus ou moins prononcée. Pruneelles, kakis, poires, cornouillers – vous souvenez-vous du goût acidulé et astringent caractéristique de ces fruits et baies ? Tout dépend de la présence de tanins (astringents).

Ils ont aussi autres noms : tanins, tanins ou acide tannique . Ils peuvent être organiques (végétaux et animaux), mais aussi minéraux. La particularité des tanins n'est pas seulement qu'ils donner un goût particulier. Lorsqu'ils réagissent avec les sels de fer, ils forment une couleur noire avec une teinte bleuâtre ou verdâtre.

Si vous êtes intéressé non seulement par la formule et la classification des tanins, mais également par leurs propriétés bénéfiques et leur contenu dans différents produits, alors le matériel suivant est destiné uniquement à vous.

Quand l’humanité a-t-elle commencé à comprendre l’importance des tanins ?

À cette époque, quand les gens devaient échapper au froid, ils se rendaient compte qu’ils devaient s’habiller avec quelque chose de chaud. La première chose qu'ils ont commencé à porter était des peaux d'animaux tués. Mais un problème important est apparu. Les matières premières non transformées avaient une odeur désagréable, se gâtaient rapidement et étaient très résistantes. Même après que les gens ont appris à gratter soigneusement tout excès de peau, à les lubrifier avec de la graisse et à les pétrir intensément pour leur donner de l'élasticité, cela n'a pas beaucoup aidé.

Il est impossible de dire qui a été le premier à remarquer la capacité de certaines parties des plantes à rendre la peau plus douce et plus forte, mais c'est arrivé. Il existe une opinion selon laquelle c'est l'écorce de chêne qui fut utilisée pour la première fois et ses propriétés tannantes furent découvertes . C'est peut-être pour cela que les tanins ont ensuite été nommés ainsi.

Action et propriétés pharmacologiques

Les astringents sont très solubles dans l'eau et l'alcool et se caractérisent par un goût astringent. À basse température, ils sont détruits, de sorte que de nombreux fruits et baies deviennent moins acidulés après congélation.

Tanins s'oxyde très facilement et rapidement au contact du fer, de l'étain, du zinc. Si des produits à forte concentration sont coupés avec un couteau en fer, ils noirciront. Il est donc recommandé d’utiliser de l’acier inoxydable dans de tels cas.

Grâce à de nombreuses expérimentations, les propriétés des tanins ont été révélées. Il s'est avéré que ils sont capables d'effets astringents, anti-inflammatoires, aseptiques et hémostatiques . La pharmacognosie, qui étudie les médicaments obtenus à partir de matières premières naturelles végétales et animales, ne pouvait s'empêcher de porter son attention sur l'effet de ces substances sur l'organisme. Par conséquent, ils ont rapidement commencé à être utilisés pour la fabrication de médicaments destinés à un usage interne et externe.

La base du mécanisme d'action des tanins est déterminée par leur capacité à précipiter les protéines, à avoir un effet irritant ou astringent sur les muqueuses. Plus leur concentration est élevée, plus cet effet est prononcé. Grâce à la formation d'une couche de protéines précipitées, une protection contre divers irritants, y compris des micro-organismes étrangers, est assurée. Un film protecteur albuminé imperméable est créé. Ce processus s'appelle le bronzage.

Avantages et utilisations des tanins

Les bienfaits des tanins pour l’organisme sont prouvés. Ceci est confirmé par les faits suivants :

• Ils sont utilisés pour rincer la bouche et la gorge dans des maladies inflammatoires aussi douloureuses que stomatite, mal de gorge, pharyngite etc.
• Étant donné que les tanins sont capables de désinfecter et de bloquer efficacement l'influence de la microflore pathogène, les solutions contenant ces substances utilisé comme compresse pour les écorchures, les coupures, les brûlures.
• Si un empoisonnement du corps s'est développé, accompagné d'une intoxication grave, ils aideront à lier et à éliminer les substances nocives. Avec les sels de métaux lourds, les tanins créent des composés insolubles, grâce auxquels ils cessent d'avoir un effet négatif. Les tanins sont un antidote efficace contre les intoxications par la caféine, la nicotine, la morphine, la cocaïne, le mercure, les sels de plomb, le cuivre et les radionucléides. Ils peut prévenir le développement de la leucémie , le mal des rayons et d'autres conséquences des dommages radioactifs.
• Ils aident le tractus gastro-intestinal à réduire la fonction sécrétoire. Ils forme une coque protectrice sur la membrane muqueuse, prévenant l'inflammation et les dommages dus à ses propriétés en vitamine P . Les décoctions de plantes, qui contiennent une grande quantité de substances astringentes, sont indiquées contre la diarrhée, les troubles de l'estomac et les flatulences.
• Ils nettoient parfaitement les intestins et lient les composés cancérigènes.
• Sont des antibiotiques naturels. Ils sont capables d'éliminer des bactéries pathogènes telles que la dysenterie, les bacilles typhoïdes et paratyphoïdes, les staphylocoques.
• Aide à arrêter le saignement , peut être pris pendant les règles et la ménopause.
• Élimine les calculs rénaux.
• Rend les vaisseaux sanguins plus élastiques.
• Les médicaments qui en contiennent utilisé pour les maladies du nez et des yeux (sous forme de gouttes).

Les tanins contenus dans les matières végétales ne sont pas utilisés uniquement pour le tannage du cuir. Ils sont utilisés dans la production de colorants et d’encres naturels.

Or, même en connaissant les propriétés bénéfiques des tanins, il faut prendre quelques précautions. En grande quantité, ils peuvent provoquer de la constipation.

De plus, il est conseillé de consommer des aliments à forte teneur en ces substances entre les repas ou à jeun. Si vous les mangez ou les buvez presque simultanément avec de la nourriture, les tanins commenceront à réagir avec les protéines et n'atteindront pas la muqueuse intestinale. Autrement dit, il n'y aura aucun avantage.

On les trouve en plus grande concentration dans les plantes (on les trouve dans presque tout le monde), en particulier dans les plantes tropicales. La plupart ils s'accumulent dans la sève cellulaire, les rhizomes, les racines, les feuilles, l'écorce. On les retrouve en quantités variables chez les représentants des familles du myrte, des légumineuses, du saule, du sarrasin, des rosacées, des pins, du hêtre et de la bruyère. On les trouve également dans les mousses, les champignons, les algues, les fougères, les lichens et les prêles. Ceux-ci dans Les ingrédients sont également très utiles pour les plantes elles-mêmes, car ils empêchent le bois de pourrir..

Il y a beaucoup de tanins dans ces parties des plantes:

• rhizomes de potentille, serpentine, bergénie ;
• feuilles de sumac, scumpia, laurier ;
• écorce de chêne;
• racines et rhizomes de burnt;
• cerisier des oiseaux et baies de myrtille.

Les fruits et les baies contiennent également beaucoup de tanins. Il y en a moins dans les légumes. Les prunelles, le sorbier des oiseleurs et les kakis contiennent des quantités record de ces substances. On en trouve aussi beaucoup dans le cornouiller, le coing et le cassis. Cependant, dans les abricots, les pêches et autres fruits, bien que pas en très grande quantité, ils sont toujours présents.

Les tanins du thé ont prouvé leur efficacité. Il y en a beaucoup plus dans les feuilles de thé que même dans les fruits. D'ailleurs, dans le thé vert, sa concentration atteint 10-30%, en - 5-17% . On sait qu'en raison de la présence de tanin, la boisson agit comme un antibiotique et un désinfectant actif, ainsi que Aide à neutraliser le strontium radioactif dans le corps.

Les tanins se trouvent également dans le café naturel, ce qui lui confère un goût amer et un arrière-goût acidulé. Il y a beaucoup de tanins dans le vin rouge, qui donnent du corps et... On les retrouve également dans le cognac, qui améliore l'absorption de la vitamine C.

Comment préparer des matières premières végétales pour y préserver les tanins

Pour éviter que les matières premières végétales ne perdent des tanins utiles, vous devez les sécher le plus rapidement possible. Il est important d’éviter l’oxydation et l’hydrolyse.

Les plantes, leurs fruits ou baies doivent être séchés dans une pièce sèche, emballés et à une température de 50-60ºC. La matière première doit l'être dans son intégralité, car une fois broyée, elle commence à s'oxyder sous l'influence de l'oxygène. En faisant tout correctement, vous pourrez préserver au maximum les bienfaits des plantes.

Vous savez maintenant que les tanins sont des auxiliaires bénéfiques pour l’organisme et indispensables dans certaines industries. Et le meilleur, c’est qu’ils sont accessibles à tous, car on les retrouve dans de nombreuses plantes.

Isolement du député . Les tanins sont un mélange de divers polyphénols qui ont une structure complexe et sont très labiles, de sorte que l'isolement et l'analyse des composants individuels des tanins sont très difficiles. Pour obtenir la quantité de tanins, les plantes médicinales sont extraites avec de l'eau chaude, refroidies, puis l'extrait est traité séquentiellement :

Éther de pétrole (nettoyage de la chlorophylle, des terpénoïdes, des lipides) ;

Éther diéthylique, extrayant les catéchines, les acides hydroxycinnamiques et autres phénols

Acétate d'éthyle, dans lequel passent les leucoanthocyanidines, les esters d'acide hydroxycinnamique, etc. L'extrait aqueux restant avec des tanins et d'autres composés phénoliques et les fractions 2 et 3 (éther diéthylique et acétate d'éthyle) est séparé en composants individuels par différents types de chromatographie. Utiliser:

a) chromatographie d'adsorption sur colonnes de cellulose,

b) chromatographie de partage sur colonnes de gel de silice ;

c) chromatographie d'échange d'ions ;

d) filtration sur gel sur colonnes Sephadex, etc.

L'identification des tanins individuels est basée sur la comparaison RF dans les méthodes chromatographiques (sur papier, dans une fine couche de sorbant), les études spectrales, les réactions qualitatives et l'étude des produits de décomposition (pour les tanins hydrolysés).

Détermination quantitative des tanins . peut être divisé en gravimétrique, titrimétrique et physico-chimique.

Méthodes gravimétriques sont basés sur la précipitation quantitative des tanins avec des sels de métaux lourds, de la gélatine ou sur l'adsorption avec de la poudre solide. Méthode unifiée de poids (BEM) largement utilisé dans l'industrie du cuir. La méthode est basée sur la capacité des tanins à former des composés puissants avec le collagène cutané. Pour ce faire, l'extrait aqueux obtenu du médicament est divisé en deux parties égales. Une partie est évaporée, séchée et pesée. La deuxième partie est traitée avec de la poudre pour la peau (peau) et filtrée. Le filtrat est évaporé, séché et pesé. Sur la base de la différence des résidus secs des parties 1 et 2 (c'est-à-dire contrôle et expérience), la teneur en tanins dans la solution est déterminée.

Méthode titrimétrique, inclus dans le GF-XI, appelée méthode de Leventhal-Neubauer, est basée sur l'oxydation de groupes OH phénoliques avec du permanganate de potassium (KMnO 4) en présence d'acide indigo sulfonique, qui est un régulateur et un indicateur de la réaction. Après une oxydation complète des tanins, l'acide indigo sulfonique commence à s'oxyder en isatine, ce qui fait que la couleur de la solution passe du bleu au jaune doré. Une autre méthode titrimétrique pour la détermination des tanins, la méthode de précipitation des tanins avec du sulfate de zinc suivie d'un titrage complexométrique avec Trilon B en présence de xylène orange, est utilisée pour déterminer les tanins dans les feuilles de sumac tannique et de maquereau tannique.

Méthodes physico-chimiques de détermination des tanins:

1) colorimétrique– DV donner des composés colorés au phos-molyb ou au phos-tungstène-mi en présence de Na 2 CO 3 ou avec le réactif de Folin-Denis (pour les phénols).

2) chromato-spectrophotométrique Et néphélométrique méthodes utilisées principalement dans la recherche scientifique.

Répartition dans le monde végétal, conditions de formation et rôle des plantes. Une faible teneur en tanins a été constatée dans les céréales. Chez les dicotylédones, certaines familles - par exemple les Rosacées, le sarrasin, les légumineuses, le saule, le sumac, le hêtre, la bruyère - contiennent de nombreux genres et espèces, où la teneur en tanins atteint 20 à 30 % ou plus. La teneur la plus élevée en tanins a été trouvée dans les formations pathologiques - les galles (jusqu'à 60-80 %). Les formes boisées sont plus riches en tanins que les formes herbacées. Les tanins sont inégalement répartis dans les organes et tissus végétaux. Ils s'accumulent principalement dans l'écorce et le bois des arbres et arbustes, ainsi que dans les parties souterraines des plantes herbacées vivaces ; les parties vertes des plantes sont beaucoup plus pauvres en tanins.

Les tanins s'accumulent dans les vacuoles et, lors du vieillissement cellulaire, ils sont adsorbés sur les parois cellulaires. Le plus souvent, les plantes contiennent un mélange de tanins hydrolysés et condensés avec une prédominance de composés de l'un ou l'autre groupe.

À mesure que les plantes vieillissent, la quantité de tanins diminue. Les plantes poussant au soleil accumulent plus de tanins que celles poussant à l’ombre. Les plantes tropicales produisent beaucoup plus de tanins que les plantes tempérées.

Action biomédicale et utilisation des tanins . Les tanins et les médicaments qui en contiennent sont principalement utilisés comme astringents, agents anti-inflammatoires et hémostatiques.

A. Principalement hydrolysable :

Rhizomata Bistortae – Rhizomes serpentins.

Renouée serpent (racine de serpent, bobine) (Polygonumbistorta) – sem. Sarrasin, Polygonacées

Composition chimique des médicaments: 15-25% de tanins, acides principalement hydrolysables, gaulois, ellagique, ascorbique, phénolcarboxylique et organique, flavonoïdes (quercétine)

L'action principale du médicament: astringent, antiseptique.

Nature de la demande. L'infusion et la décoction sont utilisées comme astringents, hémostatiques, anti-inflammatoires en cas de saignements mineurs du tractus gastro-intestinal, d'inflammations aiguës et chroniques de l'estomac, d'intoxications alimentaires, de dermatoses, de brûlures, d'inflammations de la cavité buccale, du vagin, des hémorroïdes.

Folia Cotinus coggygriae – Feuilles de cuir Skumpia.

Cuir de maquereau (Cotinus coggygria) – sem. Sumacacées, Anacardiacées– arbuste ramifié

Composition chimique des médicaments. 0,2% d'huile essentielle (myrcène majoritairement), ~25% de tanin, flavonoïdes.

L'action principale du médicament: astringent, désinfectant.

Nature de la demande. utilisé pour la production industrielle de tanin et de ses préparations, ainsi que du médicament Flacumine, qui est la somme des aglycones de flavonol provenant des feuilles de maquereau et a un effet cholérétique.

FoliaRhuscoriariae – Feuilles de sumac.

Sumac bronzant (Rhuscoriaires) – sem. Sumacacées, Anacardiacées- buisson

Composition chimique des médicaments. tanins (25%, le tanin prédomine), flavonoïdes (2,5% - dérivés de quercétine, myricétine, kaempférol), acides gallique et ellagique.

L'action principale du médicament: astringent, désinfectant.

Nature de la demande. sont utilisés pour la production industrielle de tanin et de ses préparations, utilisés dans le traitement des processus inflammatoires de la cavité buccale-nasale par rinçage avec une solution aqueuse ou aqueuse à 2%, des ulcères, des plaies et des brûlures par lubrification avec 3-10% solutions et onguents.

Rhizomes Bergeniaecrassifoliae – rhizomes de Badana Thickifolia.

Bergenia à feuilles épaisses (Bergéniacrassifolia) – sem. Saxifragacées, Saxifragacées- plante herbacée vivace

Composition chimique des médicaments: tanins (~27%, dont tanin – 8-10%), acide gallique, arbutine (jusqu'à 22%), hydroquinone libre (2-4%), coumarines, résines, vitamine C, sucre,

Nature de la demande. L'infusion et la décoction de racines et de rhizomes de bergenia sont utilisées en gynécologie, en dentisterie pour arrêter les saignements et comme anti-inflammatoire, antiseptique, pour le traitement de la gastrite et des ulcères de l'estomac et du duodénum, ​​en médecine traditionnelle - pour le traitement des maladies pulmonaires. tuberculose.

Rhizomataetradices Sanguisorbae –rhizomes et racines de burnet.

Pimprenelle (officinalis) (Sangusorba officinalis) – sem. les Rosacées, Rosacées- plante herbacée vivace

Composition chimique du LR: tanins, principalement hydrolysables (12-20%), acides ellagique, gallique, flavonoïdes, anthocyanes, catéchines, saponines.

L'action principale du médicament: astringent, hémostatique.

Nature de la demande. Les rhizomes et les racines de pimprenelle sont utilisés sous forme de décoction et d'extrait liquide comme astringent pour les maladies gastro-intestinales, l'entérocolite et la diarrhée ; comme hémostatique pour les saignements utérins et hémorroïdaires, l'hémoptysie.

FructusAlni – infrutescence (cônes) de l'Aulne.

FoliaAlniincanae – feuilles d'aulne gris.

Folia Alniglutinosa– feuilles d'aulne noir.

Aulne noir(collant) (Alnusglutinosa), O. gris (Alnusincana) – sem. Bouleau, Bétulacées– des arbres ou grands arbustes.

Composition chimique des médicaments: les fruits de l'aulne contiennent des tanins, de l'acide gallique (jusqu'à 4%), des flavonoïdes. Dans les feuilles o. gris et o. le noir contient des flavonoïdes.

L'action principale du médicament: astringent, désinfectant, anti-inflammatoire.

Nature de la demande. La décoction et l'infusion sont utilisées par voie orale pour les entérites aiguës et chroniques, les colites, la dysenterie ; en externe – pour se gargariser, rince-bouche.

B. Principalement condensé :

CortexQuerqus–écorce de chêne

Chêne commun(Querqusrobur) – sem. Hêtre, Fagacées– arbre puissant

Composition chimique des médicaments: tanins (10-20%, hydrolysés et condensés), acides gallique, ellagique, flavonoïdes

L'action principale du médicament: astringent, antibactérien.

Nature de la demande. sous forme de décoction et d'infusion comme agent astringent externe et anti-inflammatoire pour le traitement de la stomatite, de la gingivite, de l'inflammation de la cavité buccale, des organes génitaux féminins, des brûlures cutanées, de la transpiration.

Rhizomata tourmentilles – rhizomes de Potentilla erecta.

Potentille erecta– Potentillaerecta– sem. les Rosacées, Rosacées- plante herbacée vivace

Composition chimique des médicaments. tanins (15-30% : les tanins condensés prédominent), anthocyanes, catéchines.

L'action principale du médicament

Nature de la demande. La décoction et l'infusion sont utilisées en interne comme agent astringent et anti-inflammatoire pour les affections inflammatoires de la bouche et du larynx, les troubles gastro-intestinaux et en externe pour l'eczéma.

Fructus Vaccinium mirtilli – fruits de myrtille

Cormi Vaccinii mytilli – pousses de myrtilles.

Myrtille (Vaccinium myrtille L.) –Bruyère, Éricacées- petit arbuste

Composition chimique des médicaments. tanins (18-20%), dont condensés (5-12%), flavonoïdes (hypérine, rutine), anthocyanes.

L'action principale du médicament: astringent, anti-inflammatoire.

Nature de la demande. le plus souvent sous forme d'infusion, de décoction, de gelée en relation avec des processus de fermentation et de putréfaction dans les intestins, des colites. Il a été démontré que les myrtilles améliorent l’apport sanguin aux yeux, stabilisent la structure de la rétine et améliorent la vision nocturne.

Fructus Padi –fruits de cerisier des oiseaux.

Cerisier des oiseaux (Padusavium), en partie asiatique (P. asiatique) – sem. les Rosacées, Rosacées– arbre atteignant 10 m de haut

Composition chimique des médicaments: tanins (15% : principalement condensés), acides phénolcarboxyliques et organiques, vitamine C, sucres, glycosides terpénoïdes

L'action principale du médicament: astringent, désinfectant.

Nature de la demande. La décoction et l'infusion sont utilisées comme astringent et désinfectant gastro-intestinal : pour la dysenterie et la diarrhée. Les fruits des cerisiers des oiseaux font partie des préparations gastriques.

Résultat de la collecte :

PROCÉDÉS DE DÉTERMINATION QUANTITATIVE DES TANINS DANS LES MATIÈRES PREMIÈRES VÉGÉTALES MÉDICINALES

Mikhaïlova Elena Vladimirovna

doctorat biol. Sciences, assistant au VSMA du nom. N.N. Bourdenko,

Voronej

E-mail: milenok2007@ randonneur.ru

Vassilieva Anna Petrovna

Martynova Daria Mikhaïlovna

étudiant de VSMA du nom. N.N. Burdenko, Voronej

E-mail: Darjamartynova92@ randonneur.ru

Les tanins (TS) constituent un groupe très répandu de substances biologiquement actives (BAS) dans les plantes, qui possèdent diverses propriétés pharmacologiques, ce qui explique leur utilisation répandue en médecine. Par conséquent, le problème de la détermination de la bonne qualité des médicaments et des matières premières végétales médicinales (MPS) contenant ce groupe de substances biologiquement actives est très pertinent. L’une des principales méthodes permettant d’établir la bonne qualité des MP est l’analyse phytochimique quantitative. Il existe actuellement plusieurs méthodes permettant de réaliser ce type d’analyse des médicaments contenant du DV, mais les données de la littérature sont dispersées. En relation avec ce qui précède, il est nécessaire de systématiser les méthodes d'analyse quantitative du DVvLRS.

Les méthodes classiques pour déterminer la teneur en DV sont les méthodes gravimétriques (poids) et titrimétriques. La base de la méthode gravimétrique est la propriété du DV d'être précipité par la gélatine, les ions de métaux lourds et la poudre de peau (peau). La première étape consiste à déterminer la masse de résidu sec dans l’extrait aqueux du médicament. Dans ce cas, l'extrait est séché jusqu'à un poids constant. L'étape suivante est la libération de l'extrait du DV par traitement avec de la poudre de goli. Dans ce cas, un précipité se forme, qui est ensuite éliminé par filtration, la quantité de résidu sec est à nouveau déterminée et la quantité de DV est déterminée en fonction de la différence des masses indiquées du résidu sec.

Les méthodes titrimétriques comprennent :

1. Titrage avec une solution de gélatine. Cette méthode repose également sur la propriété du DV d'être précipité par des protéines (gélatine). Les extraits aqueux de matières premières sont titrés avec une solution de gélatine à 1%. Le titre est fixé sur la base de tanins purs. Le point d'équivalence est établi en sélectionnant le plus petit volume de titrant provoquant une précipitation complète de la substance active. Cette méthode est très spécifique et permet d'établir le contenu du vrai DV, mais elle est assez longue à mettre en œuvre et l'établissement du point d'équivalence dépend du facteur humain.

2. Titrage permanganométrique. Cette méthode est présentée dans la monographie générale de la pharmacopée et repose sur l'oxydation facile du DV par le permanganate de potassium en milieu acide en présence d'acide indigo sulfonique. À la fin du titrage, la couleur de la solution passe du bleu au jaune doré. Malgré la rentabilité, la rapidité et la facilité de mise en œuvre, la méthode n'est pas suffisamment précise, ce qui est associé à la difficulté d'établir le point d'équivalence, ainsi qu'à la surestimation des résultats de mesure en raison de la forte capacité oxydante du titrant.

3. Titrage complexométrique au Trilon B avec précipitation préalable du sulfate de zinc DV. La méthode est utilisée pour la détermination quantitative du tanin dans les matières premières du sumac tannant et du sumac tannant. L'orange xylénol est utilisée comme indicateur.

Les méthodes physicochimiques pour la détermination quantitative de la DV dans les plantes médicinales comprennent la méthode photoélectrocolorimétrique, spectrophotométrique, ampérométrique et la méthode de titrage potentiométrique et coulométrique.

1. Méthode photoélectrocolorimétrique. Il est basé sur la capacité du DV à former des composés chimiques colorés avec des sels de fer (III), de l'acide phosphotungstique, du réactif de Folin-Denis et d'autres substances. L'un des réactifs est ajouté à l'extrait de la plante à l'étude et, après l'apparition d'une couleur stable, la densité optique est mesurée sur un photocolorimètre. Le pourcentage de DV est déterminé à partir d'un graphique d'étalonnage construit à l'aide d'une série de solutions de tanins de concentration connue.

2. Détermination spectrophotométrique. Après obtention de l'extrait aqueux, une partie de celui-ci est centrifugée 5 minutes à 3000 tr/min. Une solution aqueuse à 2 % de molybdate d'ammonium est ajoutée au centrifugat, puis diluée avec de l'eau et laissée 15 minutes. L'intensité de la couleur obtenue est mesurée sur un spectrophotomètre à une longueur d'onde de 420 nm dans une cuvette d'épaisseur de couche de 10 mm. Le calcul des tanides est effectué selon un modèle standard. Le tanin GSO est utilisé comme échantillon standard.

3. Détermination chromatographique. Pour identifier les tanins condensés, de l'alcool (alcool éthylique à 95 %) et des extraits aqueux sont obtenus et une chromatographie sur papier et sur couche mince est réalisée. La catéchine GSO est utilisée comme échantillon standard. La séparation est réalisée dans des systèmes solvants butanol - acide acétique - eau (AWA) (40 : 12 : 28), (4 : 1 : 2), 5% d'acide acétique sur papier « Filtrak » et plaques « Silufol ». La détection des zones de substances sur le chromatogramme est réalisée à la lumière UV, suivie d'un traitement avec une solution à 1 % d'alun d'ammonium ferrique ou une solution à 1 % de vanilline, d'acide chlorhydrique concentré. À l'avenir, il sera possible d'effectuer une analyse quantitative en éluant le DV de la plaque avec de l'alcool éthylique et en effectuant une analyse spectrophotométrique en prenant le spectre d'absorption dans la plage de 250 à 420 nm.

4. Méthode ampérométrique. L'essence de la méthode est de mesurer le courant électrique qui se produit lors de l'oxydation des groupes –OH d'antioxydants phénoliques naturels à la surface de l'électrode de travail à un certain potentiel. Tout d'abord, une dépendance graphique du signal de l'échantillon de référence (quercétine) sur sa concentration est tracée et, à l'aide de l'étalonnage résultant, la teneur en phénols dans les échantillons étudiés est calculée en unités de concentration de quercétine.

5. Titrage potentiométrique. Ce type de titrage d'un extrait aqueux (notamment décoctions d'écorce de chêne) a été réalisé avec une solution de permanganate de potassium (0,02 M), les résultats ont été enregistrés à l'aide d'un pH-mètre (pH-410). La détermination du point final du titrage a été réalisée selon la méthode Gran en utilisant le programme informatique « GRAN v.0.5 ». Le type de titrage potentiométrique donne des résultats plus précis, car dans ce cas, le point d'équivalence est clairement fixé, ce qui élimine le biais des résultats dû au facteur humain. Le titrage potentiométrique est particulièrement important par rapport au titrage avec indicateur lors de l'étude de solutions colorées, telles que. extraits aqueux contenant du DV.

6. Titrage coulométrique. La méthode de détermination quantitative de la teneur en DV dans les médicaments en termes de tanins par titrage coulométrique est que l'extrait de la matière première étudiée réagit avec le titrant coulométrique - les ions hypoiodite, qui se forment lors de la dismutation de l'iode électrogénéré dans un milieu alcalin. La génération électrique d'ions hypoiodite est réalisée à partir d'une solution 0,1 M d'iodure de potassium dans une solution tampon phosphate (pH 9,8) sur une électrode de platine à un courant constant de 5,0 mA.

Ainsi, pour la détermination quantitative de la DV dans les plantes médicinales, de telles méthodes de détermination quantitative de la DV dans les médicaments sont utilisées comme titrimétriques (y compris titrage avec de la gélatine, du permanganate de potassium, titrage complexométrique avec Trilon B, titrage potentiométrique et coulométrique), gravimétrique, méthodes photoélectrocolorimétriques, spectrophotométriques, ampérométriques.

Références:

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15681 2018-09-22

Que sont les tanins ?

Les tanins sont des composés phénoliques naturels de haut poids moléculaire largement répandus dans le monde végétal. En termes plus simples, ce sont des substances qui donnent à divers fruits un goût astringent et acidulé. Selon leur concentration dans une plante particulière, celle-ci aura une astringence plus ou moins prononcée. Épine, kaki, poire, - Vous souvenez-vous du goût caractéristique de ceux-ci et des baies ? Tout dépend de la présence de tanins.

Quelles propriétés ont les tanins ? On pourrait dire grand. Les composés phénoliques ont un effet sur l'environnement organique et éliminent l'influence des micro-organismes. Les tanins végétaux se caractérisent par un goût astringent particulier et sont divisés en organiques et minéraux. Le bio peut être d’origine végétale ou animale.

Quelles plantes contiennent le plus de tanins ?

• Rhizomes serpentins
• Rhizomes de potentille
• Rhizomes et racines de burnet
• Fruit
• Fruits de cerisier des oiseaux
• Fruit d'aulne
• Rhizomes de Bergénia
• Feuille de maquereau
• feuille de sumac
• Noir
• Cornouiller
• Kaki
• Noir

Les tanins du thé ont prouvé leur efficacité. Il y en a beaucoup plus dans les feuilles de thé que même dans les fruits. D'ailleurs, dans le thé vert, sa concentration atteint 10-30%, dans le thé noir - 5-17% . On sait qu'en raison de la présence la boisson fonctionne comme ça et un désinfectant actif, ainsi que Aide à neutraliser le strontium radioactif dans le corps.

Les tanins se trouvent également dans la nature , qui lui confèrent un goût amer et un arrière-goût acidulé. Il y a beaucoup de tanins dans le vin rouge, qui donnent du corps Et . On les retrouve également dans le cognac, qui améliore l'absorption de la vitamine C.

L'effet des tanins sur le corps humain

Les tanins ont un effet assez notable sur le corps humain. Tout d'abord, on note leur propriété astringente. Elle se manifeste dans des domaines variés. Tanins lorsqu'ils sont utilisés correctement, ils atteignent avec succès et l'aider à faire face à ses troubles, , diarrhée.

Les tanins, lorsqu'ils interagissent avec les protéines, provoquent leur coagulation partielle et créent un film albuminé protecteur imperméable (bronzage), sur lequel repose leur effet bactéricide et anti-inflammatoire sur les muqueuses et les surfaces des plaies.

Avantages pour la digestion

Les tanins ont un effet positif sur le fonctionnement du tractus gastro-intestinal dans son ensemble. En particulier, ils suppriment l’activité des micro-organismes pathogènes, favorisent l’élimination des dépôts nocifs et contribuent à une meilleure absorption des composés bénéfiques.

Les tanins, substances actives, contribuent également au nettoyage global du corps. Ils en éliminent divers types de toxines et de déchets. Ces composés peuvent aider même en cas d'exposition aux radiations.

Propriétés hémostatiques

La propriété hémostatique des tanins est également particulièrement remarquable. Il est activement utilisé dans divers cas. Les tanins aident à arrêter à la fois externes et internes . Ils sont donc utilisés pour des travaux lourds , hémorroïdes, saignements des gencives et lésions cutanées - coupures et autres blessures.

Effet anti-inflammatoire

Ils possèdent des tanins et des propriétés anti-inflammatoires. Ils protègent les tissus des infections, détruisent les agents pathogènes , arrêter le processus inflammatoire. Ainsi, ils sont largement utilisés en médecine pour traiter une grande variété de maladies. Les tanins sont particulièrement efficaces contre l'inflammation de la bouche et de la gorge, car dans ce cas il y a un effet direct par . Lorsqu'un traitement de maladies intestinales ou gastriques est nécessaire, il est nécessaire de boire des décoctions médicinales à jeun et entre les repas afin que les composés actifs puissent atteindre facilement un organe particulier. Bien entendu, les tanins résistent également efficacement aux processus inflammatoires de la peau. Ils contribuent notamment à éliminer l’acné et certaines maladies dermatologiques. Dans ces cas, des pommades et lotions spéciales contenant des tanins sont utilisées.

De plus, les tanins ont les propriétés bénéfiques suivantes :

• Éliminer .
• Ils fabriquent des vaisseaux sanguins plus élastique.
• , qui contiennent des tanins, utilisé pour les maladies du nez et des yeux (sous forme de gouttes).
• Les produits alimentaires contenant ces substances ont un effet bénéfique en empêchant le dépôt de sels de métaux lourds, la diarrhée et les dommages radioactifs.
• Ils sont utilisés pour rincer la bouche et la gorge dans des maladies inflammatoires aussi douloureuses que stomatite, , etc.
• Étant donné que les tanins sont capables de désinfecter et de bloquer efficacement l'influence de la microflore pathogène, les solutions contenant ces substances utilisé comme compresse pour les écorchures, les coupures, .
• Si développé organisme, accompagné de graves , ils aideront à lier et à éliminer les substances nocives. Les tanins créent des composés insolubles avec des alcaloïdes et des sels de métaux lourds, grâce auxquels ils cessent d'avoir un effet négatif. Les tanins sont un antidote efficace contre les intoxications , ces matières premières à une température de 50 à 60°C. et stocké dans un endroit sec dans un emballage étanche, de préférence dans son intégralité, car à l'état broyé la matière première subit une oxydation rapide en raison d'une augmentation de la surface de contact avec air.

  Conclusion

  Les tanins jouent un rôle important dans la promotion d'une bonne santé. On les retrouve dans certains produits souvent présents sur presque toutes les tables. Pour en bénéficier, rappelez-vous que tout est bon avec modération. Lorsque vous utilisez des tanins à des fins médicinales, suivez les règles de prise de médicaments et surveillez votre bien-être.

GOST 24027.2-80

Groupe P69

NORME INTER-ÉTATS

MATIÈRES PREMIÈRES VÉGÉTALES MÉDICINALES

Méthodes de détermination de l'humidité, de la teneur en cendres, des extraits et des tanins, de l'huile essentielle

Méthodes de détermination de l'humidité, de la teneur en cendres, des matières extractives et tanniques, de l'huile essentielle

Date d'introduction 1981-01-01

Par décret du Comité d'État des normes de l'URSS du 6 mars 1980 N 1038, la date d'introduction a été fixée au 01/01/81

La période de validité a été levée conformément au protocole n° 5-94 du Conseil interétatique de normalisation, de métrologie et de certification (IUS 11-12-94).

AU LIEU DE GOST 6076-74 concernant les méthodes de détermination de l'humidité, de la teneur en cendres, des extraits et des tanins, de l'huile essentielle

RÉÉDITER.


Cette norme s'applique aux matières premières végétales médicinales et établit des méthodes pour déterminer l'humidité, la teneur en cendres, les extraits, les tanins et les huiles essentielles.

1. MÉTHODE DE DÉTERMINATION DE L'HUMIDITÉ

1.1. La méthode de détermination de l'humidité est basée sur la détermination de la perte de masse due à l'humidité hygroscopique et aux substances volatiles lors du séchage des matières premières jusqu'à un état absolument sec.

1.2. Échantillonnage

1.2.1. Échantillonnage - selon GOST 24027.0-80.

1.3. Équipements, matériels et réactifs



armoire de séchage de laboratoire selon ND ;

balances de laboratoire selon GOST 24104-88 *;
______________
GOST R 53228-2008

balances analytiques selon GOST 24104-88;

poids selon GOST 7328-82 *;
______________
* GOST 7328-2001 est en vigueur sur le territoire de la Fédération de Russie, ci-après dans le texte. - Note du fabricant de la base de données.

dessiccateur selon GOST 25336-82;

scoop;

ciseaux;

tasses à peser (bugs) avec un couvercle rodé selon GOST 25336-82 ;

pinces à creuset;

vaseline technique;

chlorure de calcium fondu selon ND.

1.4. Préparation à l'examen

L'échantillon analytique est rapidement broyé avec des ciseaux ou des sécateurs jusqu'à une granulométrie d'environ 10 mm, mélangé et deux échantillons pesant 3 à 5 g chacun sont prélevés, pesés avec une erreur ne dépassant pas 0,01 g. Chaque échantillon est placé dans un pré. -Bouteille pesée et numérotée avec le couvercle.

Lors du recalcul de la teneur en cendres et en substances actives pour des matières premières absolument sèches, la perte de masse lors du séchage est déterminée sur des échantillons préparés pour les tests appropriés. Dans ce cas, simultanément aux échantillons destinés à déterminer les cendres et les substances actives, deux échantillons de matières premières pesant 1 à 2 g chacun sont prélevés, pesés avec une erreur ne dépassant pas 0,0005 g.

1.5. Réalisation du test

Les bouteilles préparées avec les portions pesées, ainsi que les couvercles retirés, sont rapidement placées dans une étuve chauffée à 100-105 °C. Dans le même temps, la température dans l’armoire baisse. Le temps pendant lequel les matières premières doivent être séchées est compté à partir du moment où la température dans l'armoire atteint 100-105°C. Le séchage est effectué jusqu'à poids constant.

Une masse constante est considérée comme atteinte si la différence entre deux pesées ultérieures après 30 minutes de séchage et 30 minutes de refroidissement au dessicateur n'excède pas 0,01 g.

Lors du recalcul de la teneur en cendres et en principes actifs pour des matières premières absolument sèches, le séchage est effectué jusqu'à ce que la différence entre deux pesées ultérieures ne dépasse pas 0,0005 g.

La première pesée des racines, des graines, des fruits et de l'écorce est effectuée après 3 heures, des feuilles, des fleurs et des herbes - après 2 heures. Les flacons de pesée contenant les échantillons sont retirés de l'armoire à l'aide de pinces à creuset et placés pendant 30 minutes pour être refroidis dans un récipient. dessiccateur, au fond duquel se trouve du chlorure de calcium anhydre. Les bouteilles refroidies sont recouvertes de couvercles et pesées. Le chlorure de calcium est périodiquement calciné ou remplacé par un nouveau.

1.6. Traitement des résultats

La teneur en humidité des matières premières () en pourcentage est calculée à l'aide de la formule

où est la masse de matières premières avant séchage, g ;

Poids des matières premières après séchage, g.

Le résultat final du test est considéré comme la moyenne arithmétique des résultats de deux déterminations parallèles, calculée au dixième de pour cent, dont l'écart admissible ne doit pas dépasser 0,5 %.

2. MÉTHODE DE DÉTERMINATION DE LA TENEUR EN CENDRES

2.1. La méthode de détermination de la teneur en cendres est basée sur la détermination des résidus non combustibles de substances inorganiques restant après la combustion et la calcination des matières premières. Les cendres sont divisées en :

les cendres totales, qui sont la somme des substances minérales inhérentes à la plante et des impuretés minérales étrangères (terre, sable, cailloux, poussières) ;

cendres, insolubles dans l'acide chlorhydrique à 10 %, qui sont le résidu après traitement des cendres totales avec de l'acide chlorhydrique et constituées principalement de silice.

2.2. Échantillonnage

2.2.1. Échantillonnage - selon GOST 24027.0-80.

2.3. Matériel et réactifs

Pour réaliser le test utiliser :

balances de laboratoire selon GOST 24104-88;

balances analytiques selon GOST 24104-88;

poids selon GOST 7328-82;

tamis selon TU 23.2.2068-89 ;

creusets en porcelaine selon GOST 9147-80 ;

chlorure de calcium fondu selon NTD ;

dessiccateur selon GOST 25336-82;

un brûleur à gaz ou une cuisinière électrique domestique selon la documentation normative et technique ;

four à moufle;

bain-marie;

lunettes de montre;

filtre sans cendre ;

acide nitrique selon GOST 4461-77;

nitrate d'ammonium, qualité analytique, solution à 10 % ;

acide chlorhydrique selon GOST 3118-77, chimiquement pur, solution à 10 % ;

peroxyde d'hydrogène (perhydrol) selon GOST 10929-76, solution à 5 % ;

nitrate d'argent selon GOST 1277-75, qualité analytique, solution à 2 % ;

eau distillée selon GOST 6709-72;

2.4. Préparation à l'examen

Un échantillon analytique de matières premières est broyé et tamisé à travers un tamis percé de trous de 2 mm de diamètre.

Un échantillon pesant 1 à 3 g est prélevé dans un creuset en porcelaine préchauffé à poids constant pour déterminer les cendres totales et 5 g pour déterminer les cendres insolubles dans l'acide chlorhydrique à 10 %. L'échantillon est pesé avec une erreur ne dépassant pas 0,0005 g.

2.5. Réalisation du test

Les matières premières dans le creuset sont soigneusement carbonisées sur une faible flamme d'un brûleur à gaz, en essayant de s'assurer que la flamme ne touche pas le fond du creuset, ou sur une cuisinière électrique. Parallèlement, un grillage en amiante est posé dessus. Après carbonisation complète de la matière première, le creuset est transféré dans un four à moufle pour brûler le charbon et calciner complètement le résidu. La calcination est réalisée à chaleur rouge (550-650 °C) jusqu'à masse constante, en évitant la fusion des cendres et leur frittage avec les parois du creuset. Une fois la calcination terminée, le creuset est refroidi pendant 2 heures, puis placé dans un dessicateur au fond duquel se trouve du chlorure de calcium anhydre, refroidi et pesé. Une masse constante est considérée comme atteinte si la différence entre deux pesées ultérieures ne dépasse pas 0,0005 g.

Si, après refroidissement, le résidu contient encore des particules de charbon, alors quelques gouttes d'une solution à 5 % de peroxyde d'hydrogène, d'acide nitrique concentré ou une solution à 10 % de nitrate d'ammonium y sont ajoutées, évaporées sous courant d'eau au bain-marie et calcinées. encore une fois jusqu'à ce que le résidu prenne une couleur uniforme. Si nécessaire, cette opération est répétée plusieurs fois.

Pour déterminer la teneur en cendres insolubles dans une solution d'acide chlorhydrique à 10 %, on verse dans un creuset à cendres totales 15 cm d'une solution d'acide chlorhydrique à 10 % (densité 1,050 g/cm) ; Le creuset est recouvert d'un verre de montre et chauffé au bain-marie bouillant pendant 10 minutes. Ensuite, le creuset est retiré et après refroidissement, le contenu est filtré à travers un filtre sans cendre. Le creuset, le verre de montre et le filtre sont lavés à l'eau distillée jusqu'à ce que l'apparition de turbidité dans l'eau de lavage provenant d'une goutte de solution de nitrate d'argent à 2 % cesse. Le filtre est placé dans un creuset, séché, soigneusement brûlé dans le creuset, après quoi le creuset est calciné jusqu'à obtenir une masse constante de résidu.

Deux déterminations parallèles sont effectuées.

2.6. Traitement des résultats

La teneur totale en cendres () en pourcentage dans les matières premières absolument sèches est calculée à l'aide de la formule

où est la masse de cendres, g ;

Masse de matières premières, g ;


La teneur en cendres insolubles dans une solution à 10 % d'acide chlorhydrique (), en pourcentage dans les matières premières absolument sèches, est calculée à l'aide de la formule

où est la masse de cendres, g ;

- masse de cendres du filtre (si les cendres de ces derniers sont supérieures à 0,002 g) ;

- masse de matières premières, g ;

- perte de poids lors du séchage des matières premières, %.

Le résultat final du test est considéré comme la moyenne arithmétique des résultats de deux déterminations parallèles, calculée au centième de pour cent pour les matières premières dont la teneur en cendres (totales ou insolubles) ne dépasse pas 5 % et jusqu'au dixième de pour cent pour matières premières ayant une teneur en cendres (totales ou insolubles) supérieure à 5 %, dont les différences admissibles ne doivent pas dépasser 0,1 % pour les matières premières ayant une teneur en cendres totales ou insolubles de 5 % et 0,5 % pour les matières premières ayant une teneur totale ou insoluble de 5 % teneur en cendres insolubles supérieure à 5 %.

3. MÉTHODE DE DÉTERMINATION DE LA TENEUR EN SUBSTANCES EXTRACTIVES

3.1. Échantillonnage

3.1.1. Échantillonnage - selon GOST 24027.0-80.

3.2. Équipements et matériaux

Pour réaliser le test utiliser :

balances de laboratoire selon GOST 24104-88;

tasses en porcelaine d'un diamètre de 7 à 9 cm selon GOST 9147-80 ;

bain-marie;

dessiccateur selon GOST 25336-82;

fiole conique d'une capacité de 250 cm selon GOST 25336-82;

pipettes d'une capacité de 25 cm selon NTD ;

réfrigérateur en verre de laboratoire selon GOST 25336-82;

tamis selon TU 23.2.2068-89 ;

broyeur de laboratoire électrique selon NTD.

3.3. Préparation à l'examen

Un échantillon analytique de matières premières est broyé et tamisé à travers un tamis percé de trous de 1 mm de diamètre, après quoi un échantillon pesant 1 g est prélevé.

3.4. Réalisation du test

Une partie pesée de la matière première est placée dans une fiole conique, 50 cm du solvant spécifié dans le document réglementaire et technique de la matière première spécifique sont ajoutés, la fiole est fermée par un bouchon, pesée avec une erreur de pas plus de 0,01 g et laissé pendant 1 heure. Ensuite, le ballon est connecté à un condenseur à reflux et chauffé jusqu'à ébullition et maintenir une faible ébullition du liquide pendant 2 heures. Après refroidissement, le ballon avec son contenu est à nouveau fermé avec le même bouchon, pesé. et la perte de masse est complétée par le même solvant. Le contenu est soigneusement agité et filtré sur un filtre en papier sec dans un flacon sec d'une capacité de 150-200 cm. 25 cm du filtrat sont pipetés dans une tasse en porcelaine d'un diamètre de 7-9 cm, préalablement séchée à 100-. 105°C jusqu'à poids constant et pesé sur une balance analytique, évaporé au bain-marie jusqu'à sec, séché à une température de 100-105°C pendant 3 heures, puis refroidi pendant 30 minutes dans un dessicateur, au fond duquel se trouve est du chlorure de calcium anhydre et pesé.

Deux déterminations parallèles sont effectuées.

3.5. Traitement des résultats

La teneur en substances extractives () en pourcentage dans les matières premières absolument sèches est calculée à l'aide de la formule

où est la masse de résidus secs dans la tasse, g ;

- masse de matières premières, g ;

- perte de poids lors du séchage des matières premières, g.

La moyenne arithmétique des résultats de deux déterminations parallèles est considérée comme le résultat final du test.

4. MÉTHODE DE DÉTERMINATION DE LA TENEUR EN TANINS

4.1. Échantillonnage

4.1.1. Échantillonnage - selon GOST 24027.0-80.

4.2. Équipements, matériels et réactifs

Pour réaliser le test utiliser :

balances de laboratoire selon GOST 24104-88;

balances analytiques selon GOST 24104-88;

poids selon GOST 7328-82;

tamis selon TU 23.2.2068-89 avec des trous d'un diamètre de 3 mm ;

flacons coniques d'une capacité de 500 et 750 cm selon GOST 25336-82 ;

bain-marie;

burettes d'une capacité de 25-50 cm selon NTD ;

pipettes d'une capacité de 2, 20, 25 cm selon NTD ;

filtres en verre;

bouteilles en verre orange avec bouchons rodés ;

coton médical selon GOST 5556-81;

eau distillée selon GOST 6709-72;

sel disodique de l'acide indigo-5, 6-disulfonique (carmin d'indigo) ;

iodure de potassium selon GOST 4232-74;

acide sulfurique selon GOST 4204-77;

acide chlorhydrique selon GOST 3118-77;

amidon soluble selon GOST 10163-76;

permanganate de potassium selon GOST 5777-84;

thiosulfate de sodium cristallin selon GOST 244-76 ;

dichromate de potassium selon GOST 4220-75, qualité chimique;

carbonate de sodium anhydre selon GOST 83-79, qualité chimique ;

broyeur de laboratoire électrique selon NTD.

4.3. Préparation à l'examen

Préparer 0,1 n. solution de permanganate de potassium 3,3 g de permanganate de potassium sont dissous dans 1000 cm d'eau et bouillis pendant 10 minutes. Le flacon est bouché, laissé deux jours dans un endroit sombre, puis filtré sur filtre en verre.

Pour établir le titre d'une solution de permanganate de potassium, mesurer avec précision 25 cm de la solution préparée à partir d'une burette dans un ballon muni d'un bouchon rodé contenant 20 cm de solution d'iodure de potassium. Acidifier avec 2 cm d'acide sulfurique dilué, fermer avec un bouchon imbibé d'une solution d'iodure de potassium et laisser reposer 10 minutes dans un endroit sombre. Diluer 200 cm d'eau en lavant le bouchon avec de l'eau et l'iode libéré est titré à 0,1 N. solution de thiosulfate de sodium jusqu'à décoloration (indicateur - amidon).

où est le volume de solution de thiosulfate de sodium consommé pour le titrage, cm ;

- volume de solution de permanganate de potassium prélevé pour fixer le titre (25 cm) ;

- facteur de correction de la solution de thiosulfate de sodium.

Pour préparer de l'acide sulfurique dilué, ajoutez soigneusement 1 partie d'acide sulfurique concentré à 5 parties d'eau.

Pour préparer une solution d'iodure de potassium, 10 g du réactif sont dissous dans de l'eau fraîchement bouillie et refroidie et dilués avec la même eau à 100 cm. La solution doit être incolore. La solution doit être conservée dans des bocaux en verre orange munis de bouchons rodés dans un endroit à l'abri de la lumière.

Préparer 0,1 n. solution de thiosulfate de sodium, 26 g de thiosulfate de sodium et 0,1 g de carbonate de sodium sont dissous dans de l'eau fraîchement bouillie et refroidie et portés à 1000 cm avec la même eau. La solution est laissée au repos 10 jours dans un endroit à l'abri de la lumière. S'il y a des sédiments, le liquide est siphonné.

Le titre de la solution de thiosulfate de sodium est ajusté au bichromate de potassium. Pour ce faire, environ 0,15 g de dichromate de potassium finement broyé, recristallisé dans l'eau chaude et séché à 130-150°C jusqu'à poids constant, est pesé avec une erreur de 0,0002 g maximum et dissous dans 50 cm d'eau dans un ballon. avec un bouchon rodé. Ajouter 2 g d'iodure de potassium dissous dans 10 cm d'eau, 5 cm d'acide chlorhydrique, fermer avec un bouchon imbibé d'une solution d'iodure de potassium et laisser reposer 10 minutes dans un endroit sombre. Diluer avec 200 cm d'eau, rincer le bouchon à l'eau et titrer avec la solution de thiosulfate de sodium préparée jusqu'à ce qu'elle devienne jaune verdâtre. Ajoutez ensuite 2-3 cm de solution d'amidon et continuez à titrer jusqu'à ce que la couleur bleue vire au vert clair.

Le facteur de correction () est calculé à l'aide de la formule

où 0,004904 est la quantité de bichromate de potassium contenue dans 1 cm de 0,1 N. solution, g;

- portion pesée de bichromate de potassium, g ;

- volume de solution de thiosulfate, cm.

Pour préparer l'acide indigo sulfonique, 1 g de carmin d'indigo est dissous dans 25 cm d'acide sulfurique concentré, puis 25 cm supplémentaires d'acide sulfurique concentré sont ajoutés et dilués avec de l'eau distillée jusqu'à 1000 cm, en versant soigneusement la solution dans l'eau.

A partir d'un échantillon analytique de matières premières, broyé et tamisé à travers un tamis percé de trous de 3 mm de diamètre, un échantillon pesant 2 g est prélevé avec une erreur ne dépassant pas 0,001 g

4.4. Réalisation du test

La matière première est placée dans une fiole conique d'une capacité de 500 cm3, versée avec 250 cm3 d'eau portée à ébullition et chauffée à reflux au bain-marie bouillant pendant 30 minutes sous agitation occasionnelle. Le liquide est décanté, refroidi à température ambiante et décanté d'environ 100 cm dans une fiole conique d'une capacité de 200 à 250 cm à travers du coton afin que les particules de matière première ne tombent pas dans la fiole. Pipeter ensuite 25 cm du liquide obtenu dans une autre fiole conique d'une capacité de 750 cm, ajouter 500 cm d'eau, 25 cm de solution d'acide indigo sulfonique et titrer sous agitation constante avec 0,1 N. solution de permanganate de potassium jusqu'à ce qu'elle soit jaune doré, en la comparant avec la couleur de la solution de test témoin.

Pour réaliser un test de contrôle, verser 525 cm d'eau distillée dans une fiole conique d'une capacité de 750 cm, ajouter 25 cm de solution d'acide indigosulfonique et titrer sous agitation constante avec 0,1 N. solution de permanganate de potassium jusqu'à jaune doré

4.5. Traitement des résultats

La teneur en tanins () en pourcentage dans les matières premières absolument sèches est calculée à l'aide de la formule

où est le volume exactement 0,1 N. solution de permanganate de potassium utilisée pour le titrage de l'extrait, cm ;

- volume exactement 0,1 N. solution de permanganate de potassium utilisée pour le titrage dans l'analyse de contrôle, cm ;

0,004157 - la quantité de tanins correspondant à 1 cm exactement 0,1 n. solution de permanganate de potassium (en termes de tanin), g ;

- masse de matières premières, g ;

- perte de poids lors du séchage des matières premières, % ;

250 - capacité de la fiole jaugée, cm;

25 - volume d'extrait liquide prélevé pour le titrage, voir.

5. MÉTHODE DE DÉTERMINATION DE LA TENEUR EN HUILE ESSENTIELLE

5.1. L'essence de la méthode est la distillation de l'huile essentielle à partir de matières premières végétales avec de la vapeur d'eau et la mesure ultérieure de son volume, exprimé en pourcentage par rapport aux matières premières absolument sèches.

La détermination est effectuée selon la méthode 1, 2a ou 2b. La méthode 2b est utilisée dans les cas où la matière première contient des huiles essentielles qui subissent des modifications lors de la distillation, forment une émulsion, s'épaississent facilement ou ont une densité proche ou supérieure à un.

Le poids d'un échantillon de matière première prélevé pour analyse, son degré de broyage, le temps de distillation - selon le document réglementaire et technique des matières premières végétales spécifiques.

5.2. Échantillonnage

5.2.1. Échantillonnage - selon GOST 24027.0-80.

5.3. Détermination de la teneur en huiles essentielles selon la méthode 1 (Ginsburg)

5.3.1. Équipements, matériels et réactifs

Pour réaliser le test utiliser :

balances de laboratoire selon GOST 24104-88;

broyeur de laboratoire électrique selon NTD ;

ballon à fond rond à col large d'une capacité de 1000 cm3 selon GOST 25336-82 ;

ballon à fond plat d'une capacité de 1000 cm
bouchon en caoutchouc;

ciseaux;

acétone selon GOST 2603-79, qualité analytique.

5.3.2. Réalisation du test

Un échantillon de matières premières broyées est placé dans un ballon à col large ou à fond plat, 300 cm d'eau y sont versés et fermés par un bouchon en caoutchouc avec un condenseur à bille à reflux. Des crochets métalliques sont fixés au bas de la fiche, sur lesquels un récepteur gradué est accroché à l'aide d'un fil fin de sorte que l'extrémité du réfrigérateur se trouve exactement sous l'extension en forme d'entonnoir du récepteur à une distance d'environ 1 mm, sans le toucher. Le récepteur doit s'insérer librement dans le col du ballon, sans toucher les parois du col, et être éloigné d'au moins 50 mm du niveau d'eau (Fig. 1). Le ballon avec son contenu est chauffé à ébullition et maintenu pendant la durée spécifiée dans le document réglementaire et technique de la matière première spécifique.

Merde.1. - Dispositif de détermination de la teneur en huiles essentielles selon la méthode 1

Dispositif pour déterminer la teneur en huiles essentielles selon la méthode 1 (Ginsburg)

1 - flacon ; 2 - bouchon en caoutchouc ; 3 - réfrigérateur; 4 - récepteur gradué

Les vapeurs d'eau et d'huile essentielle se condensent dans le réfrigérateur et le liquide s'écoule dans le récipient. L'huile se dépose dans le coude gradué du récepteur et l'eau s'écoule à travers le plus petit coude du récepteur dans le ballon.

Le volume d'huile dans la partie graduée du récipient est déterminé une fois la distillation terminée et le ballon refroidi à température ambiante. Après six à huit déterminations, l'appareil est lavé à l'acétone puis à l'eau.

5.3.3. Traitement des résultats

- masse de matières premières, g ;

- perte de poids lors du séchage des matières premières, %.

5.4. Détermination de la teneur en huiles essentielles par la méthode 2a (Clevenger)
;

moulin électrique;

broyeur électrique de laboratoire selon ND.

Merde.2. - Dispositif de détermination de la teneur en huiles essentielles selon les méthodes 2a et 2b

Dispositif de détermination de la teneur en huiles essentielles selon les méthodes 2a et 2b (Clevenger)

1 - flacon ; 2 - tube courbe porteur de vapeur ; 3 - réfrigérateur; 4 - receveur gradué ; 5 - robinet de vidange ; 6 - extension du récepteur ; 7 - tube récepteur latéral ; 8 - tuyau en caoutchouc ; 9 -tuyau de vidange

5.4.2. Préparation à l'examen

Avant chaque détermination, l'appareil est nettoyé par passage de vapeur pendant 15 à 20 minutes.

5.4.3. Réalisation du test

Une partie pesée de matière végétale broyée est placée dans un ballon, 300 cm d'eau sont ajoutés, le ballon est relié par une fine section à un tube conducteur de vapeur, et les tubes gradués et de drainage sont remplis d'eau par un robinet à l'aide d'un tuyau en caoutchouc se terminant par un entonnoir. Le contenu du ballon est chauffé à ébullition et bouilli à une intensité à laquelle le débit de distillat doit être de 60 à 65 gouttes par minute pendant le temps spécifié dans le document réglementaire et technique pour une matière première spécifique. 5 minutes après la fin de la distillation, mesurez le volume d'huile essentielle dans la partie graduée du récepteur. Pour cela, ouvrez le robinet et faites descendre la partie du distillat jusqu'au niveau du tube gradué.

5.4.4. Traitement des résultats

La teneur en huile essentielle () en pourcentage dans les matières premières absolument sèches est calculée à l'aide de la formule

où est le volume d'huile essentielle, cm ;

- masse de matières premières, g ;

- perte de poids lors du séchage des matières premières, %.

5.5. Détermination de la teneur en huiles essentielles selon la méthode 2b

5.5.1. Matériel et réactifs

Pour effectuer le test, utilisez l'équipement spécifié à la clause 5.4.1 et le décalin.

5.5.2. Réalisation du test

Une portion pesée de matière végétale broyée est placée dans un ballon, 300 cm d'eau sont ajoutés, le ballon est relié par une fine section à un tube à vapeur et les tubes gradués et de vidange sont remplis d'eau par un robinet à l'aide d'un embout en caoutchouc. dans un entonnoir. Ensuite, à l'aide d'une pipette, environ 0,5 ml de décaline est versé dans le récepteur par le tube à air et le volume de décaline prélevé est mesuré avec précision en abaissant le niveau de liquide dans la partie graduée du tube. Ensuite, le test est effectué conformément à la clause 5.4.3.

Deux déterminations parallèles sont effectuées.

5.5.3. Traitement des résultats

La teneur en huile essentielle () en pourcentage dans les matières premières absolument sèches est calculée à l'aide de la formule

où est le volume de la solution d'huile en décaline, cm ;

- volume de décaline, cm ;

- masse de matière première, g ;

- perte de poids lors du séchage des matières premières, %.

Le résultat final du test est la moyenne arithmétique des résultats de deux déterminations parallèles, calculée au centième de pour cent.



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publication officielle
Matières premières végétales médicinales. Partie 2.
Racines, fruits, matières premières : Sam. GOST. -
M. : Maison d'édition des normes IPK, 1999