Dodaj u favorite

EPIFITSKA MIKROFLORA ZRNA I NJENE PROMJENE TIJEKOM SKLADIŠTENJA KRMIVE
Na površini zrna živi raznolika mikroflora. Neki mikroorganizmi ulaze iz rizosfere, neki se unose s prašinom i kukcima. Međutim, na zrnu, kao i na cijeloj površini biljaka, razvija se samo nekoliko mikroorganizama, tzv. epifiti. Epifitski mikroorganizmi koji se razmnožavaju na površini stabljike, lišća i sjemena biljaka nazivaju se mikroorganizmi filosfere. Epifiti se hrane produktima egzosmoze biljaka. Životni uvjeti epifitskih bakterija su osebujni. Zadovoljavaju se malim zalihama hranjivih tvari na površini biljaka, otporni su na visoke koncentracije fitoncida i podnose periodične fluktuacije vlažnosti. Stoga je njihov broj malen, a sastav vrsta prilično stalan. Više od 90% epifitskih mikroorganizama su bakterije truljenja. Epifitsku mikrofloru uglavnom predstavljaju bakterije koje ne nose spore. Većinu bakterijske populacije žitarica čine štapići roda Pseudomonas bez spora, koji se aktivno razvijaju na površini biljaka. Osobito je čest Pseudomonas herbicola (Erwinia herbicola), koji na gustim podlogama stvara zlatnožute kolonije. Tu su i Pseudomonas fluorescens, mikrokoke, bakterije mliječne kiseline, kvasci. Bacili i mikroskopske gljive čine mali postotak.
Pod određenim uvjetima, epifitski mikroorganizmi mogu biti korisni za biljke, jer sprječavaju prodiranje parazita u biljna tkiva.
Kod skladištenja žitarica epifitski mikroorganizmi mogu imati negativnu ulogu. U zrelom zrnu voda je u vezanom stanju i nedostupna je mikroorganizmima. Na takvom zrnu nalaze se u stanju anabioze (mirovanja). Na razvoj mikroorganizama na zrnu, a time i na njegovu sigurnost, presudno utječu: vlažnost, temperatura, stupanj prozračnosti, cjelovitost zrna i stanje njegovih pokrovnih tkiva. Na zrnu visoke vlažnosti mikroorganizmi se razmnožavaju to brže što je temperatura viša.
Razvoj mikrobioloških procesa u uskladištenom zrnu s visokom vlagom dovodi do osjetnog, a ponekad i vrlo značajnog porasta temperature. Taj se fenomen naziva termogeneza.
Samozagrijavanje zrna dovodi do promjene mikroflore. Nestaje epifitna mikroflora karakteristična za zrno. Isprva se obilno razmnožavaju nepigmentirani štapići bez spora, istiskujući Erwinia herbicola. Kasnije se pojavljuju mikrokoki otporni na toplinu (termotolerantni), koji na gustim podlogama tvore najčešće male bijele plosnate kolonije, plijesni i aktinomicete. Daljnji razvoj procesa samozagrijavanja (preko 40-50°C) potiče razvoj sporotvornih i termofilnih bakterija.
Promjenom samozagrijavanja mijenja se i sastav vrsta plijesni. Vrste Penicillium koje su dominirale na početku zamjenjuju vrste Aspergillus.
Dakle, prema sastavu vrsta mikroflore, može se procijeniti ne samo je li zrno bilo podvrgnuto samozagrijavanju, već i koliko daleko je taj proces otišao. Prevladavanje Ertioinia herbicola u mikrobnoj cenozi zrna pokazatelj je njezinih dobrih svojstava. Veliki broj bakterija i gljivica koje stvaraju spore ukazuje na gubitak klijavosti sjemena.
Povoljni uvjeti za razvoj mikroorganizama na zrnu dovode do nakupljanja toksina koje oni oslobađaju. Kao rezultat toga, često dolazi do trovanja hranom kada se takvim žitaricama hrani stoka i perad.
Dakle, pravilno skladištenje žitarica treba biti ograničeno na sprječavanje razvoja mikroorganizama na njima.
Za kvantitativno izračunavanje mikroorganizama na zrnu, uzorak od 5 g se stavi u tikvicu s 50 ml sterilne vode iz slavine i 2-3 g pijeska. Tikvica se mućka kružnim rotacijskim pokretima 10 minuta. Sljedeća razrjeđenja se pripremaju iz dobivenog ekstrakta (10-2; 10-3; 10-4). Odvojenim sterilnim Mohrovim pipetama uzmite 10 ml suspenzije i prenesite je u boce koje sadrže 90 ml sterilne vode iz slavine. Zatim se iz svake tikvice u duplikatu uzme 1 ml suspenzije odgovarajućeg razrjeđenja u sterilne Petrijeve zdjelice. Ulijte u svaku Petrijevu zdjelicu 1 epruvetu rastaljenog, ali prethodno ohlađenog na 50°C MPA. Ploče se inkubiraju na 30 ° C. Zajedno s MPA, koriste se izborni mediji opisani u odjeljku Analiza silosa.
Nakon 3-5 dana inkubacije broji se ukupan broj kolonija izraslih na MPA u zdjelicama, te se izračunava broj mikroorganizama po 1 g zrna.
Da bi se odredio kvalitativni sastav mikroflore, zrna kolonije grupiraju se prema kulturnim karakteristikama, pripremaju se pripravci iz svake skupine kolonija, otkriva se pripadnost mikroorganizama rodu ili obitelji i broj bakterija svake skupine. se određuje kao postotak ukupnog broja mikroorganizama.
Za identifikaciju se pročišćavaju izolirane kulture mikroorganizama.
Na temelju mikrobiološke analize donosi se zaključak o kvaliteti zrna.
Na svježem kvalitetnom zrnu prevladava Erwinia herbicola (do 80%) koja stvara sjajne narančaste kolonije. Postoje Pseudomonas fluorescens, koji stvara žućkasto-zelenkaste fluorescentne kolonije, nepigmentirane štapiće koji ne stvaraju spore, kvasac (kolonije su sjajne, konveksne, često obojene u ružičaste tonove). Pri prebrojavanju sladovine-agara s kredom otkrivaju se bakterije mliječne kiseline koje tvore male kolonije poput leće sa zonama otapanja krede.
Erwinia herbicola, Pseudomas fluorescens nisu otkrivene na ustajalom zrnu pohranjenom u uvjetima visoke vlažnosti. Pronađene su mikrokoke koje tvore male bijele sjajne plosnate kolonije, štapiće koji stvaraju spore, aktinomicete i štapiće koji ne nose spore. Kada se računa na sladovini agar, otkriva se značajan broj gljiva, uglavnom iz roda Penicillium, kao i Aspergillus.
Materijali i oprema. Zrno u bocama je svježe i ustajalo, čuvano u uvjetima visoke vlažnosti. Vage i utezi. Satne naočale. Bočice sa sterilnom vodom (po 90 ml), tikvice sa sterilnom vodom (po 50 ml) i pijesak. Sterilne pipete Mora 10 ml i 1 ml. Sterilne Petrijeve zdjelice. MPA u epruvetama i tikvicama. Vodena kupelj, tronožac. Mikroskopi i sve što je potrebno za mikroskopiranje.
ANALIZA SILOSA
Bakterije mliječne kiseline koje žive na biljkama imaju važnu ulogu u siliranju krme. Siliranje se temelji na mliječno-kiselom fermentaciji. Bakterije mliječne kiseline fermentiraju šećere biljaka za siliranje u mliječnu i djelomično octenu kiselinu, čime se sprječava razvoj truležnih, maslačnih i drugih nepoželjnih bakterija koje kvare hranu. Bakterije mliječne kiseline snižavaju pH hraniva na 4,2-
Ako se kiselost silaže iz jednog ili drugog razloga smanji (pH postaje veći od 4,5-4,7), tada se stvaraju uvjeti koji su povoljni za vitalnu aktivnost mikroorganizama štetnih za očuvanje kbpma.
Akumulira smrdljivu maslačnu kiselinu, amine, amonijak i druge proizvode.
Kako bi se osigurao normalan razvoj bakterija mliječne kiseline tijekom siliranja, potreban je dovoljan sadržaj šećera u pogonima za siliranje i izolacija krmiva od zraka, odnosno stvaranje anaerobnih uvjeta.
Plijesni podnose jako zakiseljavanje, ali su strogi aerobi, pa se ne mogu razmnožavati u dobro prešanoj, poklopljenoj, fermentiranoj hrani.
Ako se prati razgradnja šećera i stvaranje organskih kiselina u procesu siliranja, vidi se da sa smanjenjem šećera raste količina organskih kiselina. Međutim, smanjenje pH ne ovisi samo o količini mliječne i octene kiseline, već i o puferskom kapacitetu biljnog materijala, koji pak ovisi o proteinima i solima. Što je puferiranje biljne mase veće, to je potrebno više kiselina za snižavanje pH vrijednosti hrane, tj. što više puferskog materijala veže, neutralizira dio mliječne kiseline (ione vodika). Stoga, unatoč nakupljanju kiseline, pH medija se gotovo nikada ne smanjuje dok se ne potroši sav puferski materijal. Kiseline vezane puferskim materijalom stvaraju u silosu takozvane vezane kiseline. Puferiranija sirovina za proizvodnju kvalitetne silaže trebala bi imati više šećera nego manje puferirana. Dakle, kapacitet silaže biljaka također je određen specifičnim puferskim svojstvima.
Puferski kapacitet biljne mase određuje se titriranjem usitnjene biljne mase 0,1 N otopinom mliječne kiseline do pH 4,0. Utvrđuje se koliko je mliječne kiseline potrebno da se pH pomakne na 4,0. Budući da se potroši oko 60 %. za stvaranje krmnih šećera mliječne kiseline, tada se izračunavanjem 100% određuje tzv. šećerni minimum za određeni biljni materijal, tj. najmanja količina šećera potrebna da se stvori tolika količina mliječne i octene kiseline da se pomakne pH do 4,0.
Biljke se dobro siliraju ako imaju puno šećera, a šećerni minimum je mali. Ako stvarni
Ako je sadržaj šećera u biljkama približno jednak šećernom minimumu, onda su one loše silirane i najmanje odstupanje u procesu siliranja dovest će do oštećenja silaže. Ako je stvarni sadržaj šećera manji od minimuma šećera, takve biljke se ne siliraju.
Siliranjem se čuvaju cvjetovi i listovi koji sadrže najviše hranjivih tvari. Gubitak krutine kod pravilnog siliranja ne prelazi 10-15%. Dobra silaža se odlikuje sljedećim pokazateljima: boja – maslinasto zelena
(samo se malo mijenja), miris je ugodan (namočene jabuke, pečeni kruh), pH 4-4,2, ukupna kiselost 2-2,5% (u smislu mliječne kiseline), vlažnost - 70%. Mikrofloru dobre silaže predstavljaju bacili mliječne kiseline i streptokoki mliječne kiseline, kvasac se često nalazi u malim količinama. Potonji stvaraju estere, koji silaži daju ugodan miris i obogaćuju hranu proteinima i vitaminima. Međutim, u velikim količinama, kvasci degradiraju kvalitetu silaže - smanjuju kiselost, jer se natječu s bakterijama mliječne kiseline u potrošnji šećera.
U prvom razdoblju nakon polaganja silaže brzo se razvija mikroflora mješovite faze fermentacije, obično prisutna na površini zdravih biljaka: bakterije truljenja (uglavnom štapići koji ne stvaraju spore), bakterije skupine Escherichia coli, maslačne bakterije. , itd. Kada se hrana zakiseli, zamjenjuju ih mliječni streptokoki, a zatim se štapići mliječne kiseline otporniji na kiseline. Nakon dva tjedna (sa sniženjem pH na 4,0 i niže) mikrobiološki procesi u silosu su u osnovi gotovi.
Za analizu se uzima prosječni uzorak silaže s kraja rova, jama ili zemljanih ovratnika. Da biste to učinili, uklonivši gornji sloj sterilnim nožem, izrežite kocke duž srednje linije ovratnika, s razmakom od 1 m. Stavljaju se u sterilnu staklenu posudu kapaciteta 1-2 litre s mljeveni čep kako bi silos bio čvrsto i do vrha nabijen. Uzorci se miješaju u sterilnom kristalizatoru, usitnjavaju sterilnim škarama i važu za analizu.
Studiju je preporučljivo provesti najkasnije dan nakon uzorkovanja.
Mikroskopska studija mikroflore silaže
Da biste se upoznali s mikroflorom silaže, iz nje se priprema pripravak na sljedeći način. Uzmite silažu pincetom i čvrsto je pritisnite na predmetno staklo bez dodavanja vode, pokušavajući ostaviti otisak na staklu. Droga se suši na zraku, fiksira na plamenu i boji metilen modrilom (2-3 min). Nakon ispiranja boje vodom iz slavine i sušenja dalje od plamena, mikroskopira se imerzionim sustavom.
Preparat otkriva tanke štapiće koji ne stvaraju spore, različite veličine (bakterije mliječne kiseline) i streptokoke mliječne kiseline. Lactobacterium plantarum, homofermentativni mezofilni "kratki štapići, često raspoređeni u paralelne redove, obično prevladavaju među njima. Ponekad se mogu naći pupajuće stanice kvasca. Bakterije koje stvaraju spore su rijetke. U lošoj silaži, štapići koji stvaraju spore (bakterije maslačne kiseline, aerobne bakterije truljenja) ), kao i gljive plijesni.
Kvantifikacija mikroorganizama u silaži
Uzorak silaže od 5 g stavi se u tikvicu s 50 ml sterilne vode iz slavine i 2-3 g pijeska. Tikvica se mućka kružnim rotacijskim pokretima 10 minuta. Naknadna razrjeđenja se pripremaju iz dobivenog ekstrakta (10-2; 10+ 10+ 10+ 10~6), a zatim se iz odgovarajućih razrjeđenja siju na elektivne podloge, 1 ml suspenzije za dubinsku inokulaciju, 0,05 ml suspenzije za površinsku inokulaciju. . Usjevi se drže na temperaturi od 28°C.
Određivanje broja bakterija mliječne kiseline provodi se na agaru sladovine s kredom ili agaru kupusa s kredom (mediji 1, 1a), kao i na agaru kupusa s alkoholom i kredom (medij 2) - duboka sjetva. Oko kolonija bakterija mliječne kiseline, zbog nakupljanja mliječne kiseline, nastaju zone otapanja krede (slika 37).
Kolonije bakterija mliječne kiseline broje se na agaru sladovine s kredom i agaru kupusa s kredom.
6. dan, a na kupus "agar s alkoholom i kredom - 7-10. dan. Medij 2 je neophodan za identifikaciju bakterija mliječne kiseline u sastavu epifitske mikroflore izvorne biljne mase, budući da alkohol inhibira rast strane mikroflore Količina strane mikroflore (aerobnih truležnih mikroorganizama) određuje se dubokom inokulacijom na peptonski agar (medij 3).Kolonije se broje na 5-

Riža. 37. Zone otapanja krede oko kolonija bakterija mliječne kiseline u silaži.
7. dan.
Broj mikroskopskih gljiva i kvasaca određuje se na sladovinom agaru sa streptomicinom (medij 4) površinskom inokulacijom. Kolonije se broje 3-4. dan (po potrebi ponovno 7-8. dan).
Titar maslačnih bakterija utvrđuje se na tekućem mediju Emtseva (medij 5a) i mediju krumpira (medij 5). Za određivanje broja spora bakterija maslačne kiseline inokulacija se provodi iz suspenzije, nakon pasterizacije od 10 minuta na 75°C. Rezultati analize bilježe se prema intenzitetu razvijanja plina (komadići krumpira isplivaju na površinu tekućine), a titar maslačnih bakterija i njihovih spora određuje se metodom graničnih razrjeđenja po McCreadyju.
Aerobne proteolitičke bakterije broje se u mesno-peptonskoj juhi (medij 6) nakupljanjem plina u plovcima. Usjevi se drže na 28°C dva tjedna.
Pri analizi travnih silosa uzgojenih uz pozadinu visokih doza dušičnih gnojiva, denitrifikacijske bakterije također se broje na Giltai mediju (medij 7). Usjevi se drže 10-12 dana na 28°C. Denitrifikatori se broje prema intenzitetu razvijanja plina i promjeni boje indikatora.
U analizi silaže uzimaju se u obzir i spore aerobnih bacila truljenja. Na gustom mediju (srednji 8)
obaviti površinsku sjetvu. Čašice se inkubiraju na 28°C, broje se kolonije 4. dana.
Bakterije iz skupine Escherichia coli broje se na podlozi Kessler ili Bulir za razvijanje plina i njegovo nakupljanje u plovcima. Epruvete se inkubiraju 48 sati na 40-42°C.
Kompozicija izbornih medija
Srijeda 1. Wort-agar s kredom. Sladina razrijeđena na 3% prema Eallingu - 1 l, agar - 20-25 g, sterilna kreda - 30 g. Sterilizirano na 0,5 atm 30 minuta.
srijeda 1.a. Agar za kupus s kredom. Juha od kupusa - 900 ml, ekstrakt kvasca - 100 ml, pepton - 10 g, glukoza - 20 g, natrijev acetat - 3,35 g, mangan sulfat - 0,025 g, agar - 15-20 g.
U tikvice se dodaje sterilna kreda u količini od 5 g na 200 ml medija. Sterilizirajte na 0,5 atm 30 minuta.
Srijeda 2. Kupus agar sa alkoholom i kredom. 20 ml etilnog alkohola (96%) na 200 ml medija doda se u medij otopljen i ohlađen na 50 °C, temeljito protrese i izlije u Petrijeve zdjelice s inokulumom.
Srijeda 3. Peptonski agar. . Pepton - 5 g, K2HPO4 - 1 g,. KH2PO4 - 0,5 g, MgSOi - 0,5 g, NaCl - tragovi, voda iz slavine - 1 l, agar, dobro opran, - 15-20 g. Sterilizirano na 1 atm 20 minuta.
Srijeda 4. Wort agar sa streptomicinom. Sladina razrijeđena na 3% prema Ballingu - 1 l, agar - 25 g. Sterilizirano na 0,5 atm 30 minuta. Prije izlijevanja medija u Petrijeve zdjelice dodajte 80-100 jedinica agao sladovine u sladovinu. streptomicina po mililitru medija.
Srijeda 4.a. Zakiseljeni sladovini agar. Sladina razrijeđena na 3% prema Ballingu - 1 l, agar - 20-25 g. Sterilizirano na 0,5 atm 30 minuta. Prije ulijevanja medija u Petrijeve zdjelice, u rastopljeni sladovni agar doda se 2 ml mliječne kiseline (na 1 litru medija), koja se kuha 10 minuta u vodenoj kupelji.
Srijeda 5. Krumpir medij s kredom. U epruvete se doda sterilna kreda (na vrhu skalpela), 8-10 kockica krumpira veličine 2-3 mm prelije se vodom iz slavine do s/4 volumena - epruvete. Sterilizirajte na 1 atm 30 minuta.
Srijeda 5.a. Krumpirov škrob - 20 g, pepton - 5 g, autolizat kvasca - 0,2 mg / l, KH2P04 - 0,5 g, K2HPO4 - 0,5 g, MgSC>4 - 0,5 g, NaCl - 0,5 g, FeSO4 - 0,01 g, MnSO4 - 0; 01 g, CaCO3 - 10 g, mješavina elemenata u tragovima br M. V. Fedorov - 1 ml, destilirana voda - 1 l, tnoglikolna kiselina - 0,05%, neutralna usta - 0,004%) pH 7,4-7,5. Medij se sterilizira na -0,5 atm 30 minuta. Temperatura inkubacije usjeva je 30-35°C.
Srijeda 6. Mesno-peptonska juha. Pepton - 10 g, NaCl - 4 g, mesna juha - 1 l. Ulijte u epruvete s plovcima do 3/" volumena. Sterilizirajte na 1 atm 20 minuta.
Srijeda 7. Giltai srijeda (izmijenjeno). Natrijev citrat - 2 g, KNO3 - 1 g, KH2P04 - 1 g, K2NR04 - 1 g, MgS04 -
1 g, CaCl2 - 0,2 g, FeCl3 - tragovi, destilirana voda - 1 l,
1% otopina bromtimol plavog (pH 6,8-7,0). Sterilizirajte prn 1 atm 20 minuta.
Srijeda 8. Meso-peptonski agar i sladovina-agar 1: 1. Sterilizirati na. 0,5 atm 30 min.
Srijeda 9. Kesslerova srijeda. Na 1 litru vode iz slavine dodati 50 ml svježe volove žuči i 10 g peptona. Smjesa se kuha 15 minuta u vodenoj kupelji, protrese. Kad se peptoi otopi, procijedi se kroz vatu, pa se doda 10 g laktoze. Nakon otapanja laktoze uspostavlja se blago alkalna reakcija (pH 7,6) i dodaje se 4 ml 1% vodene otopine gentianvioleta u omjeru 1 g suhe boje na 25 l medija. Tekućina se ulije u epruvete s plovcima i sterilizira na 1 atm 15 minuta.
Srijeda 10. Srijeda Bulir. U mesno-peptonsku juhu dodajte 12,5 g manitola i 6 ml 1% neutralne otopine. Medij se ulije u epruvete s plovcima i sterilizira na 0,5 atm 30 minuta. Medij ima boju trešnje, s razvojem E. coli postaje narančast i plin se nakuplja u plovku.
Kolonije koje dominiraju na čvrstim podlogama se mikroskopski pregledaju. Za dokazivanje bakterija maslačne kiseline iz epruveta s krumpirom priprema se pripravak u usitnjenoj kapi uz dodatak Lugolove otopine.
Određivanje kiselosti
Određivanje ukupne kiselosti u silaži. Uzima se uzorak silaže od 20 g i stavlja u konusnu tikvicu od 500 ml s povratnim hladilom. Sadržaj tikvice se ulije u 200 ml destilirane vode, dobro promiješa i zagrijava 1 sat. otopine natrijevog hidroksida u prisutnosti fenolftaleina dok se ne pojavi stabilna, blago ružičasta boja.
Ukupni sadržaj kiseline u silaži izražen u mliječnoj kiselini izražava se u postocima. 1 ml 0,1 n. Otopina NaOH odgovara 0,009 g mliječne kiseline. Množenjem iznosa s 0,1 n. NaOH, koji se koristi za titraciju ekstrakta iz 100 g silaže, za 0,009, naći količinu kiseline u silosu (%).
Primjer izračuna. Za titraciju 10 ml ekstrakta, 1,7 ml 0,1 n. NaOH, dakle, 34 ml 0,1 N će otići na 200 ml. NaOH.
Od 20 g silaže dobije se 200 ml ekstrakta, a za neutralizaciju 100 g silaže X ml 0,1 n. NaOH:
100.34
X \u003d -¦ \u003d 170 ml 0,1 i. NaOH.
Množenjem 170 sa 0,009 dobivamo postotak mliječne kiseline:
170 X0,009=1,53%
Dovoljno točni rezultati postižu se čak i ako se određivanje kiselosti provodi na sljedeći način. Uzeti uzorak silaže od 5 g, usitniti u mužaru i staviti u široku epruvetu (promjera 2-
cm). Sadržaj se ulije u 50 ml destilirane vode, zatvori gumenim čepom i dobro promiješa. Dio silaže se infundira na 10-12°C 30 minuta, a zatim se titracijom odredi kiselost ekstrakta. 10 ml ekstrakta (s dvostrukom količinom destilirane vode) titrira se s 0,1 i. otopine natrijevog hidroksida u prisutnosti fenolftaleina dok se ne pojavi stabilna, blago ružičasta boja.
Primjer izračuna. Za titraciju 10 ml ekstrakta, 1,7 ml 0,1 n. NaOH, dakle, za 50 ml ekstrakta-
ml; Od 5 g silaže dobije se 50 ml ekstrakta, a za neutralizaciju 100 g silaže X ml 0,1 N. NaOH:
100.8,5
X=L = 170 ml 0,1 n. NaOH;
5
170 X 0,009 = 1,53% mliječne kiseline.
Određivanje pH u silosu. Priprema ekstrakta silaže za određivanje pH u njemu provodi se na isti način kao i za određivanje ukupne kiselosti u silosu. pH se utvrđuje pomoću indikatora ili elektrometrijskog određivanja. Kada koristite indikatore, postupite na sljedeći način. U porculansku čašicu stavite 2 ml ekstrakta silaže i dodajte 2 kapi indikatora (mješavine jednakih volumena bromtimol plavog i metilrota). Usporedbom boje sadržaja čašice s donjim podacima odredite koncentraciju vodikovih iona. Boja indikatora pH Crvena 4,2 i niža Crveno-narančasta 4,2-4,6 Narančasta 4,6-5,2 Žuta 5,2-6,1 Žuto-zelena 6,1-6,4 Zelena 6,4- 7,2 Zeleno-plava 7,2-7,6 Materijali i oprema. Vage i utezi, konusne tikvice od 500 ml s refluksom, široke epruvete, tronožac s azbestnom mrežom, tikvice od 100 ml i 250 ml, lijevci, papirnati filtri, pipete od 10 ml i 2 ml, porculanske čaše, pinceta; indikatori: mješavina jednakih volumena bromtimol plavog i metilrota, fenolftaleina, metilenskog plavog, Lugolove otopine (1: 2).
Hranjive podloge, sterilne Petrijeve zdjelice, sterilne pipete od 1 ml, sterilna voda iz slavine u epruvetama od 9 ml i tikvicama od 50 ml. Čaše i epruvete s usjevima. Mikroskop i sve što je potrebno za mikroskopiranje.
STOJNI KVASAC
Kvasac sadrži mnogo lako probavljivih bjelančevina, bogat ergosterolom, koji se lako pretvara u vitamin D, vitamine A, B, E; snažno se razmnožavaju, nepretenciozni su prema staništu, lako se uzgajaju na otpadu poljoprivrede i industrije. Stočni kvasci se trenutno pripremaju u velikim količinama razmnožavanjem na industrijskom otpadu, uključujući biljne hidrolizate (slama, drveni otpad, itd.). Sada je otkriveno da se gljivica (Candida) dobro razmnožava na ugljikovodicima. To omogućuje pripremu jeftinog stočnog kvasca na otpadnim proizvodima naftne industrije. Uz dodavanje suhog kvasca u obrok krmne smjese koristi se krmni kvasac. Da biste to učinili, kultura kvasca se uvodi u zdrobljenu i navlaženu biljnu masu. Povremeno promiješajte. Kvasci se obilno razmnožavaju u hrani, što obično koincidira s njezinim zakiseljavanjem. Međutim, nakupljanje kiselina objašnjava se razvojem bakterija mliječne kiseline, koje uvijek žive na biljnoj masi. Za aktivno razmnožavanje kvasca u stočnoj hrani potrebno je niz uvjeta: dobro pripremljena hranjiva podloga (mljevenje, vlažnost, temperatura 25-27°C, dovoljno prozračivanje, pH medija 3,8-4,2). Kvasac se može hraniti samo bogatim mono- i disaharidima. Inače se neće razviti kvasac i bakterije mliječne kiseline. Osim koncentrata, sočna krmiva se podvrgavaju kvascu, u koje se umiješa gruba krma.
Tijekom kvasca koncentrirane krme gubi se 5-6% suhe tvari. Ti gubici uglavnom padaju na ugljikohidrate koje kvasac fermentira.
Kada je hrana kvasac, od interesa je mogućnost obogaćivanja hrane proteinima zbog unesenog mineralnog dušika. Kvasac, konzumirajući amonijeve soli, obogaćuje supstrat proteinima za 13-17% (na temelju suhe tvari). Kvasac čini hranu ugodno kiselom, obogaćuje je vitaminima, potiče apetit kod životinja, otklanja mnoge bolesti (paratifusne infekcije, rahitis mladih životinja, kožne lezije i druge bolesti), pozitivno utječe na proizvodnju mlijeka kod krava, proizvodnju jaja kod peradi. , i povećanje povećanja težine kod životinja. |
U laboratorijskoj praksi, stočni kvasac može se * provoditi na cikli, koja je prethodno izrezana na male komadiće, ili na mekinjama. Hrana se unosi u kalibriranu čašu od 100 ml sa staklenim štapićem, navlaženu u slučaju mekinja do konzistencije gustog kiselog vrhnja. Posude s hranom se važu. Masa navlaženog krmiva treba biti oko 100 g. Kao starter koristi se jednodnevni uzgoj pekarskog kvasca na sladovini u količini od 5% (dodaje se 5 ml suspenzije kvasca na 100 g krmiva).
Namirnice se dobro izmiješaju staklenim štapićem, čaša se pokrije papirnatom naljepnicom na kojoj je ispisana posuda čaše i masa navlažene hrane (bez startera).
Dizanu hranu ostavimo na sobnoj temperaturi uz miješanje sadržaja čaše nekoliko puta dnevno.
Nakon 1-2 dana određuje se broj stanica kvasca u hrani.
Računanje stanica kvasca u suspenziji kvasca (kiselo tijesto)
izravnim brojanjem pod mikroskopom
Određena količina kvasca se uzme u omču (1 omča zahvati 0,01 ml), nanese na predmetno staklo, doda se ista količina mlijeka i razmaže po određenoj površini (4 cm2). Preparat se suši na zraku, pažljivo fiksira na plamen i boji metilenskim modrilom 10 min.
Pod mikroskopom s imerzijskim sustavom broji se broj stanica kvasca (u 10 POLJA
vizija). Broj stanica kvasca u 1 ml kiselog tijesta određuje se formulom:
S
-ALI. 100,
Si
gdje je A prosječan broj stanica kvasca u jednom vidnom polju;
S- površina kvadrata (4 s.m2);
Si- područje vidnog polja,
Si=jrr2,
gdje je r radijus leće, određen korištenjem objektivnog mikrometra. Kap cedrovog ulja nanese se na predmetni mikrometar, a imerzijskim sustavom radijus objektiva odredi se na ravnalu predmetnog mikrometra.
Ako je r objektiva "0,08 mm, tada
S,=3.14.0.0064=0.02 mm2,
S 400 mm2
=20000.
Si 0,02 mm2
Obračun stanica kvasca u sušenoj hrani
Nakon 1-2 dana važu se čaše s kvasnom hranom. Uslijed fermentacije šećera i isparavanja vode smanjuje se masa krme. Uzeti prosječni uzorak od 10 g, dodati u tikvicu koja sadrži 100 ml sterilne vode iz slavine i mućkati 5 minuta. Zatim se određeni volumen suspenzije (0,01" ml-1 petlja) razmaže na određenu površinu predmetnog stakla (4 cm2) i doda 0,01 ml mlijeka. Preparat se suši na zraku, pažljivo fiksiran na plamena, bojan metilenskim modrilom 10 minuta.Broji se broj stanica kvasca u jednom vidnom polju (10 vidnih polja).
Prosječan broj stanica u jednom vidnom polju množi se s 20 000, sa 100 i 10 da bi se dobio broj stanica po 1 g hrane. Zatim se ta brojka množi s masom krmiva i određuje se broj kvasaca u cijelom krmivu.
Da biste saznali koliko se puta povećala količina kvasca tijekom kvasca krmiva, potrebno je njihov broj podijeliti s početnim brojem stanica kvasca sadržanih u kiselom tijestu. Hrana se smatra dobrom ako se u jednom vidnom polju ne nađe više od 10 stranih bakterijskih stanica (ne kvasca).
Materijali i oprema. Vage i utezi, čaše od 100 ml sa staklenim štapićima, repa, mekinje, suspenzija kvasca, graduirane pipete od 5-10 ml, petlje, mlijeko u epruvetama, stakalca s kvadratom od 4 cm2 od milimetarskog papira, predmetni mikrometar, indikator metilensko plavo, čaše s hranom od kvasca. Mikroskop i sve potrebno za mikroskopiranje.

Lekcija 4 MIKROBIOLOŠKA ANALIZA HRANI

Svrha lekcije. Upoznati se s metodama sanitarne i mikrobiološke analize hrane za životinje.

Materijali i oprema. Laboratorijske vage; termostat; shuttel-aparat; onaj koji isušuje; sterilne epruvete; pipete; Petrijeve zdjelice; porculanske žbuke; filteri od pamučne gaze; hranjive podloge (mesno-peptonska juha, agar, želatina, leptonska voda, bizmut-sulfit-agar, selenitna juha, magnezijev medij, medij s ureom, glukozom i željeznim sulfatom, ugljikohidrati i Andrade indikator u kombinaciji s timol plavim, amonijev citratni medij, meso - peptonska želatina, Wilson-Blair, Killian, Kitt-Tarozzi, Clark, Levin, Ploskirev, Ressel, Endo, Eikman mediji, Zeisler krvni agar, Hottinger juha, mlijeko, jetrena juha); fiziološka otopina; indikatorski papiri; laboratorijske životinje (bijeli miševi, zamorci).

Opće informacije. Od svake serije krmiva uzimaju se dva prosječna uzorka težine najmanje 500 g. Jedan se šalje u laboratorij, a drugi se čuva na farmi do završetka istraživanja. Uzorci se pakiraju u sterilne plastične ili staklene posude.

U uzorcima hrane za životinje utvrđuje se ukupna mikrobna kontaminacija, sadržaj salmonela, enteropatogenih vrsta Escherichia coli i anaeroba.

Sadržaj lekcije. Određivanje mikrobne kontaminacije. U sterilnu epruvetu staviti 1 g hrane uzetog od prosječnog uzorka, dodati 9 ml fiziološke otopine i dobro protresti (dobije se razrjeđenje 1:10). Sljedeća razrjeđenja se pripremaju iz suspenzije (1:100, 1:1000, 1:10 000, itd.). Nakon taloženja suspendiranih čestica za usjeve, tekućina se uzima iz gornjeg sloja.

Za kvantitativno izračunavanje mikroba, 1 ml se dodaje u sterilne Petrijeve zdjelice iz epruveta s različitim razrjeđenjima i dodaje se 10-15 ml sterilnog, rastopljenog i ohlađenog na temperaturu od 44-45 ° C mesno-peptonskog agara (MPA). Laganim protresanjem pločica inokulirani materijal se ravnomjerno raspoređuje u agaru. Nakon što se medij skrutne, čaše se stave (naopako) u termostat na temperaturu od 37 ° C tijekom 24-48 sati. Nakon toga se izbroje kolonije koje su izrasle. Dobiveni rezultati se pomnože sa stupnjem razrjeđenja, zbroje gore i određuje se broj mikroba u 1 g krmiva.

Primjer izračuna. U prvoj čaši pronađeno je 200 kolonija, u drugoj - 21, u trećoj - 1. U ovim čašama inokulum je uzet iz epruveta s razrjeđenjima od 1: 10 000,1: 100 000, 1: 1000 000, respektivno.

Mikrobno opterećenje mesno-koštanog brašna može se odrediti ekspresnom metodom s resazurinom. Da bi se to postiglo, 1 g prosječnog uzorka mesno-koštanog brašna stavi se u jednu sterilnu epruvetu, doda se i promućka 10 ml mesno-peptonske juhe (MPB), au drugu epruvetu samo 10 ml MPB. (za kontrolu). Epruvete se stave u termostat na 40°C 3 sata. Nakon toga im se doda 1 ml 0,01% otopine resazurina i ponovno drži u termostatu 2 sata.

Rezultati reakcija se uzimaju u obzir svakih 30 minuta. Redukcija resazurina (promjena boje iz plave u ružičastu) određuje ukupnu mikrobnu kontaminaciju mesno-koštanog brašna. Ako se u epruveti s mesnim i koštanim brašnom pojavi ružičasta boja kasnije od 2 sata, to znači da 1 g proizvoda sadrži do 500 tisuća mikroba, a kada se oboji ružičasto do 2 sata, više od 500 tisuća mikroba.

Kao kontrola služi epruveta s 10 ml MPB i 1 ml 0,01% otopine resazurina, držana u termostatu pri istoj temperaturi i ekspoziciji bez promjene boje sadržaja.

Testiranje na salmonelu. Za analizu se uzme 50-200 g ispitne hrane, zdrobi u sterilnom porculanskom tarioniku i prenese u tikvicu s medijem za prethodno obogaćivanje (peptonska voda, MPB koji sadrži 5% manitola) u omjeru materijala i medija od 1 :5. Sadržaj tikvice se dobro promiješa i stavi u termostat na temperaturu od 37 °C. Nakon 16-18 sati materijal se sije u Petrijeve zdjelice na čvrste diferencijalno dijagnostičke podloge (bizmut sulfit agar, Ploskirevljev ili Levinov medij) i na dva glavna medija za obogaćivanje (selenitni bujon, Killianov medij u omjeru 1:1).

Nakon 16-18 sati izlaganja u termostatu na 37 °C, mediji za obogaćivanje se ponovno inokuliraju u ploče s bizmut-sulfitnim agarom i u ploče s Ploskirev i Levin medijima (po izboru) i stavljaju se u termostat na 37 °C .

Čašice se pregledavaju nakon 16-24 i 48 sati.

Na bizmut sulfit agaru, S. typhi i S. paratyphi A rastu kao male, nježne, sivkastozelene kolonije s crnim središtem, S. cholerae suis kao zelene kolonije. Kolonije svih ostalih salmonela su znatno veće, tamno smeđe boje, s metalnim sjajem, okružene svijetlim aureolom, područje podloge ispod kolonije je crno. Na Ploskirevovoj podlozi rastu prozirne ili blijedo ružičaste kolonije, na Levinovoj podlozi - prozirne, blijedo, blijedo ružičaste ili ružičasto-ljubičaste.

U slučaju otkrivanja kolonija sličnih salmonelama, 3-5 njih se posije na kombinirani Resselov medij ili kosi agar s ureom i Hotgingerovim bujonom za određivanje indola i sumporovodika (ispod epruveta s bujonom stavljaju se posebni indikatorski papirići). Da bi se odredila pokretljivost kulture, inokulacija se vrši ubrizgavanjem u polutekući agar (0,3-0,5%).

Na Resselovom mediju i kosom agaru inokulacije se vrše prvo potezom po kosoj površini, a potom injekcijom u dubinu kolone. Ako se urea razgrađuje u kosom agaru, boja medija se mijenja u narančastu s indikatorom BP i smeđe-ljubičastu s indikatorom timol plavo u kombinaciji s indikatorom Andrade.

Morfologija kulture proučava se u razmazima obojenim po Gramu, a pokretljivost u visećoj ili zdrobljenoj kapi ili polutekućem agaru. Kulture koje predstavljaju gram-negativne pokretne štapiće koji fermentiraju glukozu uz stvaranje plina, ne fermentiraju laktozu i saharozu, ne razgrađuju ureu i ne stvaraju indol, ispituju se serološki - ispituju se u testu aglutinacije (RA) na stakalcu. sa setom aglutinirajućeg adsorbiranog polivalentnog O-seruma salmonele (skupine, A, B, C, D, E).

Za RA s O-serumima kulturu treba uzeti s gornjeg dijela kosog agara, a za aglutinaciju s H-serumima s donjeg dijela (kondenzatna voda), gdje su mikrobi najpokretljiviji. Prema skupini O-seruma, kulture pripadaju jednoj ili drugoj serološkoj skupini.

Istraživanja enteropatogenih tipova Escherichie coli. 50 g hrane stavi se u tikvicu koja sadrži 500 ml sterilne fiziološke otopine, mućka se na shuggel aparatu 20 minuta. Iz dobivene se suspenzije sterilnim pipetama pripremaju razrjeđenja 1: 100, 1: 1000, 1: 10 000, 1: 100 000, 1 : 1 000 000. U epruvete s Eikmanovim medijem dodaje se po 1 ml svakog razrjeđenja. Usjevi će se staviti u termostat na temperaturu od 43°C. Nakon 24 sata, rast se uzima u obzir zamućenjem medija i stvaranjem plina. Titar Escherichie coli određuje se prema najvećem razrjeđenju u kojem je još zabilježen njezin rast.

Iz epruveta u kojima se promatra rast mikroba, sijanje se provodi na gustim diferencijalnim medijima (Endo, Levin, Ploskirev), podijeljenim u sektore za svako razrjeđenje.

Tipične kolonije E. coli su okrugle, glatke, konveksne ili blago uzdignute u sredini s ravnim rubovima ružičaste, crvene ili grimizne boje, sa ili bez metalnog sjaja na Endovoj podlozi ili crne na Levinovoj podlozi.

Uzgajane izolirane kolonije S-forme (najmanje 4) supkultiviraju se na BCH, drže u termostatu na temperaturi od 37 ° C 16-24 sata. drugi - za pripremu autoklaviranog antigena, ako kuhani antigen neće biti aglutiniran polivalentnim (kompleksnim) coli serumima.

U izoliranim kulturama utvrđuju se morfološka i kulturno-biokemijska svojstva radi utvrđivanja njihove generičke pripadnosti. Morfologija bakterija proučava se u razmazima obojenim po Gramu, njihova pokretljivost određena je prirodom rasta u 0,3% polutekućoj MPA.

Za određivanje kulturoloških i biokemijskih svojstava bakterija koristi se set hranjivih podloga (s ugljikohidratima i Andrade indikatorom, citrat-amonij, mesno-peptonska želatina, MPB ili Hottinger bujon i agar s glukozom i željeznim sulfatom).

Patogena svojstva Escherichie coli utvrđuju se postavljanjem biološkog testa na bijelim miševima. Da bi se to postiglo, trima miševima težine 14-16 g intraperitonealno se ubrizgaju brisevi dnevnih agar kultura u dozi od 500 milijuna mikroba. Kultura se prepoznaje kao patogena u slučaju smrti jednog ili više miševa u prva 4 dana nakon infekcije.

Anaerobne studije. 50 g hrane samelje se u sterilnom tarioniku, razrijedi fiziološkom otopinom i nacijepi u nekoliko epruveta s Kitga-Tarozzijevom, Wilson-Blair podlogom, mlijekom i dvije čaše s podlogama i krvnim agarom po Zeissleru. Za uništavanje vegetativnih oblika mikroba jedna epruveta s tekućim medijem zagrijava se 20 minuta na temperaturi od 80 °C. Usjevi se stavljaju u termostat na temperaturu od 37 °C. Čašice trebaju biti u posebnom aparatu za anaerobne kulture ili u eksikatoru, gdje se unaprijed doda jedan ili drugi apsorber kisika.

Rezultati kulture bilježe se isti dan. Potamnjenje Wilson-Blair medija unutar 1-3 sata nakon inokulacije, koagulacija mlijeka uz stvaranje spužvastog ugruška nosnice i prozirne sirutke unutar 6 sati, kao i brzi početak rasta na Kitt-Tarozzijevom mediju (nakon 4-5 sati) s obilnim stvaranjem plina - karakteristični znakovi prisutnosti patogena Cl. perfringens.

C.I. rast. botulinum, obično opažen 2-3 dana, karakterizira zamućenje Kitt-Tarozzijevog medija, stvaranje taloga i pojava mirisa užeglog ulja.

Kada se otkrije rast na Kitt-Tarozzijevom mediju, provodi se mikroskopski pregled i izolira se čista kultura inokulacijom u 2-3 zdjelice s Zeislerovim krvnim agarom. Potonji se drže u anaerobnim uvjetima na temperaturi od 37 °C 24-48 sati, nakon čega se promatra rast u čašicama i odabiru kulture koje se klasificiraju prema morfološkim i biokemijskim svojstvima.

Biološki uzorak stavlja se na zamorce ili bijele miševe, uvodeći bujonsku kulturu intraperitonealno. Uz pozitivan rezultat, pokusne životinje ugibaju nakon 12-48 sati.

Kako bi se identificirali pojedinačni patogeni ili tipovi iste vrste, provodi se eksperiment neutralizacije toksina s posebnim serumom. Da bi se to postiglo, minimalna smrtonosna doza kulture u smjesi s 0,2-0,5 ml odgovarajućeg tip-specifičnog seruma drži se u termostatu 45 minuta i daje miševima intraperitonealno. Za kontrolu se koristi ispitna kultura ili filtrat bez seruma. Vrsta i vrsta mikroba određena je stopom preživljavanja miševa.

U istraživanju hrane za botulizam (prisutnost toksina), bijeli miševi se koriste kao pokusne životinje. U ovom slučaju mogu se primijeniti dvije metode:

a) neutralizacija toksina antibotulinskim serumom (antitoksin). Hrana se prethodno melje u sterilnom tarioniku, dodaje se fiziološka otopina (1: 4) i infundira 1-2 sata na sobnoj temperaturi. Nakon toga, infuzija se centrifugira i filtrira kroz filter od pamučne gaze. U 5 ml filtrata dodajte 0,2 ml polivalentnog antibotulinskog seruma. Smjesa se inkubira 1 sat na sobnoj temperaturi, zatim se jednoj životinji subkutano ubrizgava 0,5 ml filtrata, drugoj - mješavina filtrata sa serumom u istoj dozi.

Slični testovi mogu se provesti s čistom kulturom uzgojenom (6-7 dana) u bujonu jetre. U tom se slučaju gornji sloj kulture usisava Pasteur-ovom pipetom i prolazi kroz filter od pamučne gaze. Zatim nastavite kao gore;

b) uništavanje toksina kuhanjem filtrata. Filtrat se priprema kao što je navedeno u podstavku "a". Polovica filtrata se kuha 30 minuta. Zatim se jednoj životinji intraperitonealno ubrizgava 0,5-1 ml neprokuhanog filtrata, drugoj se injicira ista doza kuhanog filtrata.

Pozitivan rezultat biološkog testa prema prvoj i drugoj metodi je smrt miševa, koja se dogodila kako od filtrata koji nije tretiran antibotulinskim serumom, tako i od neprokuhanog filtrata.

Uvod

Široka rasprostranjenost mikroorganizama ukazuje na njihovu golemu ulogu u prirodi. Uz njihovo sudjelovanje dolazi do razgradnje raznih organskih tvari u tlu, vodenim tijelima, oni određuju kruženje tvari i energije u prirodi. O njihovoj aktivnosti ovisi plodnost tla, stvaranje ugljena, nafte i drugih minerala. Uz njihovo aktivno sudjelovanje, neprestano se provode dva suprotna procesa: sinteza složenih organskih spojeva iz mineralnih tvari i, obrnuto, razgradnja organskih tvari na mineralne. Jedinstvo ovih suprotnih procesa leži u osnovi biološke uloge mikroorganizama u kruženju tvari u prirodi. Mnogi mikroorganizmi koriste se u industriji i poljoprivrednoj proizvodnji.

Posebno je važna primjena mikroorganizama u biljnoj proizvodnji i stočarstvu. O njima ovisi pravilna priprema i skladištenje hrane, stvaranje bjelančevina hrane.

Mikrobiologija spravljanja običnog sijena.

Najčešći način očuvanja zelene mase i druge hrane je sušenje. Sijeno se proizvodi od pokošene trave s sadržajem vlage 70-80%. Sušenje sijena provodi se na različite načine - u otkosima, vitlima, na hrpama, na vješalicama itd. Čak i pri suhom vremenu i brzom sušenju neizbježan je određeni gubitak hranjivih tvari u hrani jer se nastavlja disanje i drugi enzimski procesi. u biljnoj masi . U slučaju dužeg ili manje dugotrajnog sušenja, uloga navedenih procesa uvelike raste, a to opet dovodi do povećanja gubitaka, koji su u velikoj mjeri povezani s razmnožavanjem mikroorganizama na mokroj biljnoj masi. Da bi se ograničio gubitak hranjivih tvari, oni imaju tendenciju da koriste umjetno sušenje sijena, koristeći prisilnu ventilaciju atmosferskim ili grijanim zrakom.

Sušenjem hrane za životinje postupno se smanjuje broj vitalnih mikroorganizama u njima. Ipak, na kvalitetnoj hrani biljnog podrijetla uvijek se može naći veći ili manji broj mikrobnih stanica karakterističnih za epifitnu mikrofloru, kao i drugih mikroorganizama koji tu dospiju iz tla i zraka. Oni su u anabiotskom stanju, jer u takvom okruženju nema uvjeta za njihovo razmnožavanje.

Kada se uskladištena hrana navlaži, u njoj se ubrzano odvijaju mikrobiološki procesi i istodobno raste temperatura. Ovaj proces karakterizira povećanje temperature najprije do 40-50%, a nakon 4-5 dana raste do 70-80%. Ovaj fenomen, nazvan samozagrijavanje (termogeneza), povezan je s vitalnom aktivnošću mikroflore.

Mikroorganizmi u sintetske svrhe ne koriste više od 510% energije hranjivih tvari koje konzumiraju. Ostatak energije otpušta se u okoliš uglavnom u obliku topline. Dakle, termogeneza uglavnom ovisi o nepotpunom iskorištavanju energije koju mikroorganizmi oslobađaju tijekom svojih biokemijskih procesa.

Fenomen termogeneze postaje opipljiv samo u uvjetima otežanog prijenosa topline. Inače se toplina odvodi iz okoline u kojoj se razmnožavaju mikroorganizmi, a da pritom ne dolazi do primjetnog zagrijavanja podloge. Stoga se u praksi zagrijavaju samo značajnije nakupine raznih materijala, odnosno takve mase u kojima može doći do nakupljanja topline.

Tijekom samozagrijavanja biljne mase uočava se izrazita promjena mikroflore. Prvo se mezofilni mikroorganizmi množe u masi koja se zagrijava. S porastom temperature zamjenjuju ih termofili, koji pridonose povećanju temperature organskih tvari, jer imaju izuzetnu stopu razmnožavanja.

Jako zagrijavanje dovoljno suhe i porozne mase može uzrokovati njeno pougljenje i stvaranje zapaljivih plinova metana i vodika koji se adsorbiraju na poroznu površinu pougljenjenih biljnih čestica, uslijed čega može doći do samozapaljenja. Vrlo je vjerojatno da spojevi željeza igraju ulogu katalizatora tijekom paljenja. Do paljenja dolazi samo u prisustvu zraka i samo ako masa nije dovoljno zbijena. Za vjetrovitog vremena češći su slučajevi samozapaljenja.

Termogeneza uzrokuje značajnu štetu. Uzrokuje kvarenje sijena. Međutim, s umjerenim razvojem samozagrijavanja, termogeneza može biti poželjna. Na primjer, kao rezultat zagrijavanja, "samosušeća" slama je bolja za jelo stoke. Fenomen termogeneze koristi se za pripremu tzv. smeđeg sijena. Priprema se u krajevima gdje je zbog klimatskih uvjeta otežano sušenje sijena. Istodobno, za sušenje hrane ne koristi se sunčeva energija, već toplina koja se oslobađa kao rezultat vitalne aktivnosti mikroorganizama koji žive u biljnoj masi.

U sušenoj hrani mikroorganizmi su u anabiotičkom stanju. Kada se hrana navlaži, počinju se razmnožavati i uzrokovati kvarenje.

Siliranje krme

Siliranje (fermentacija)način čuvanja zelene krme, u kojem se biljna masa održava vlažnom u jamama, rovovima ili specijalnim silosima. Hrana, više ili manje komprimirana i izolirana od zraka, prolazi kroz fermentaciju. Poprima kiselkasti okus, postaje mekši, nešto mijenja boju (poprima smeđu boju), ali ostaje sočan.

Siliranje ima niz prednosti u odnosu na druge metode konzerviranja krme: može se silirati u svim vremenskim uvjetima, takva se krma može skladištiti dugo (ponekad i desetljećima).

Postoje dva načina siliranja krme: hladno i toplo.

Metoda hladnog siliranja nazvana je tako jer tijekom sazrijevanja silaže dolazi do umjerenog porasta temperature u njoj, koja u pojedinim slojevima hrane dostiže i do 40 °C, a smatra se da je optimalna temperatura 2535 °C.

Kod takvog siliranja pokošena biljna masa se, ako je potrebno, usitnjava, stavlja do kvara u spremnik za hranu, nabija i što je moguće čvršće pokriva odozgo da se izolira od izlaganja zraku.

Kod vrućeg načina silos se puni po komadima. Za 12 dana, zelena masa je labavo položena u sloju od oko 1 1,5 m. S velikom količinom zraka u njoj se razvijaju snažni mikrobiološki i enzimski procesi, zbog čega temperatura hrane raste do 4550 ° C. Zatim se postavlja drugi sloj iste debljine kao i prvi, a on se pak podvrgava zagrijavanju. Biljke koje se nalaze ispod i omekšane pod utjecajem visoke temperature stisnute su pod težinom novog sloja hrane. Time dolazi do uklanjanja zraka iz donjeg sloja silosa, čime se zaustavljaju aerobni procesi u njemu, a temperatura počinje padati. Tako sloj za slojem ispunjava cijeli silos. Najgornji sloj hrane je zbijen i čvrsto pokriven kako bi se zaštitio od zraka. Zbog činjenice da je silos kod metode vruće silaže obično male veličine, određeno opterećenje stavlja se na gornji sloj silaže.

Zagrijavanje biljne mase povezano je s gubitkom (ponekad značajnim) hranjivih tvari u hrani. Posebno se naglo smanjuje probavljivost njegovih proteina. Stoga se vruće siliranje ne može smatrati racionalnim načinom očuvanja biljne mase.

Hladni način siliranja je najčešći. To je zbog njegove usporedne jednostavnosti i dobre kvalitete dobivene hrane. Vruća metoda siliranja priznata je kao dopuštena samo za fermentaciju krmiva s krupnim stabljikama, niske vrijednosti, budući da zagrijavanje poboljšava njihovu ukusnost.

Siliranje je povezano s nakupljanjem kiselina u hrani, koje nastaju kao rezultat fermentacije mikroba - šećernih tvari koje tvore kiseline sadržane u biljkama. Glavnu ulogu u procesu siliranja imaju bakterije mliječne kiseline, koje iz ugljikohidrata (uglavnom iz mono- i disaharida) proizvode mliječnu i djelomično octenu kiselinu. Ove kiseline imaju ugodna okusna svojstva, dobro ih apsorbira tijelo životinje i pobuđuju njegov apetit. Bakterije mliječne kiseline smanjuju pH hraniva na 4,24 i niže.

Nakupljanje mliječne i octene kiseline u silaži uvjetuje njezinu sigurnost jer se bakterije truljenja i druge nepoželjne bakterije za silažu ne mogu razmnožavati u kiseloj sredini (ispod 4.54.7). Same bakterije mliječne kiseline relativno su otporne na kiseline. Plijesni koje podnose jako zakiseljavanje su strogi aerobi i ne mogu se razmnožavati u dobro poklopljenoj fermentiranoj hrani.

Dakle, nepropusnost i kiselost silaže su glavni čimbenici koji određuju njenu stabilnost tijekom skladištenja. Ako se iz jednog ili drugog razloga kiselost hrane smanji, to neizbježno dovodi do njenog pogoršanja, jer se stvaraju uvjeti povoljni za štetne mikrobe.

Za normalno siliranje raznih krmiva potrebno je nejednako zakiseljavanje. Ponekad 0,5%-tna mliječna kiselina smanjuje pH krmiva na 4,2, tj. na vrijednost karakterističnu za dobru silažu. U drugim slučajevima potrebno je 2% iste kiseline. Takva fluktuacija ovisi o različitoj manifestaciji puferskih svojstava pojedinih komponenti biljnog soka. Mehanizam djelovanja pufera je da se u njihovoj prisutnosti neutralizira značajan dio vodikovih iona. Stoga, usprkos nakupljanju kiseline, pH medija se gotovo ne smanjuje dok se ne potroši sav pufer. U silosu se formira zaliha takozvanih puferiranih kiselina. Ulogu pufera mogu igrati razne soli i neke organske tvari (na primjer, bjelančevine) koje ulaze u sastav biljnog soka. Hrana s većim puferom mora imati više šećera kako bi proizvela dobru silažu nego ona s manje pufera. Posljedično, održivost biljaka određena je ne samo njihovim bogatstvom šećerima, već i njihovim specifičnim puferskim svojstvima. Na temelju puferskog kapaciteta biljnog soka, teoretski se mogu izračunati norme šećera potrebne za uspješno siliranje različitih biljnih materijala.

Puferski kapacitet biljnog soka izravno ovisi o količini proteina u njima. Stoga je većinu mahunarki teško silirati, budući da imaju relativno malo šećera (36%), a mnogo bjelančevina (2040%). Odličan silažni usjev kukuruza. Njegove stabljike i klipovi sadrže 810% bjelančevina i oko 12% šećera. Dobro se silira suncokret u kojem, iako ima dosta bjelančevina (oko 20%), ima dovoljno ugljikohidrata (više od 20%). Navedene brojke temelje se na suhoj tvari.

Poznavajući kapacitet puferiranja krmiva i njegov kemijski sastav, moguće je riješiti problem silosabilnosti pojedinog pogona. U osnovi, silaža je povezana s opskrbom mono- i disaharidima, koji osiguravaju potrebno zakiseljavanje određene krmiva. Njihov minimalni sadržaj za dovođenje pH hrane na 4,2 može se nazvati minimumom šećera. Prema A. A. Zubrilinu, ako hrana sadrži više šećera nego što pokazuje izračunati minimum šećera, onda će se dobro silirati.

Tehnički, nije teško odrediti minimum šećera. Titracijom se utvrđuje potrebna količina kiselina za zakiseljavanje ispitnog uzorka hrane za pH = 4,2. Zatim odredite količinu jednostavnih šećera u hrani. Uz pretpostavku da se oko 60% šećera u stočnoj hrani pretvara u mliječnu kiselinu, nije teško izračunati ima li dovoljno šećera na raspolaganju za ispravno zakiseljavanje hrane.

Kako bi se poboljšala silosabilnost, krmiva s malim udjelom ugljikohidrata miješaju se s krmivima koja sadrže puno šećera. Također je moguće poboljšati sastav silažne krme dodavanjem melase-melase prema određenom izračunu.

Neka hrana ima previše ugljikohidrata. Prilikom siliranja takvih krmiva dolazi do prekomjerne kiselosti (fenomen peroksidacije silaže). Životinje nerado jedu previše kiselu hranu. Kako bi se spriječilo zakiseljavanje silaže, krmiva koja sadrže puno šećera miješaju se s krmivima s niskim udjelom ugljikohidrata. Kisela hrana se može neutralizirati CaCO 3 .

Tijekom fermentacije dio proteina se pretvara u aminokiseline. Na temelju eksperimentalnih podataka trenutno se vjeruje da je takva transformacija uglavnom povezana s aktivnošću enzima biljnog tkiva, a ne bakterija.

Budući da se aminokiseline dobro apsorbiraju u životinjskom organizmu, djelomična pretvorba bjelančevina u aminokiseline ne bi trebala utjecati na smanjenje hranjive vrijednosti silirane mase. U dobroj silaži nema duboke razgradnje proteina uz stvaranje amonijaka.

Prilikom siliranja dolazi do djelomičnog gubitka vitamina u fermentiranoj masi, ali u pravilu znatno manjeg nego kod sušenja sijena.

Ukupan gubitak krmne tvari kod hladnog siliranja mnogo je manji nego kod vrućeg siliranja. U prvom slučaju ne smiju prelaziti 1015%, u drugom dosežu 30% ili više.

Među bakterijama mliječne kiseline postoje koki i štapići koji ne stvaraju spore. Neke od ovih bakterija stvaraju uglavnom mliječnu kiselinu iz šećera, a samo tragove drugih organskih kiselina. Drugi, osim mliječne kiseline, nakupljaju zamjetne količine octene kiseline.

Tipični predstavnici prve skupine bakterija su Streptococcus lactis, Str. thermophilus, Streptobacterium plantarum, a od predstavnika druge Lactobacillus brevis i Betabacterium breve. Ovi mikrobi su fakultativni anaerobi.

Na prirodu proizvoda koje stvaraju bakterije mliječne kiseline utječu ne samo biokemijske karakteristike određene kulture, već i sastav hranjivog medija. Na primjer, ako se ne fermentira heksoza, već pentoza, tada jedan produkt fermentacije ima tri ugljikova atoma, a drugi samo dva (prva tvar je mliječna kiselina, druga je octena). U ovom slučaju proces fermentacije može se približno izraziti sljedećom jednadžbom:

U biljnim sirovinama postoje pentozani, koji hidrolizom daju pentoze. Stoga, čak i uz normalno sazrijevanje silaže, obično nakuplja određenu količinu octene kiseline, koju također stvaraju heterofermentativne bakterije mliječne kiseline iz heksoza.

Većina bakterija mliječne kiseline živi na temperaturi od 742°C (optimum je oko 2530°C). Neke su kulture aktivne pri niskim temperaturama (oko 5°C). Uočeno je da se prilikom zagrijavanja silaže na 6065°C u njoj nakuplja mliječna kiselina koju proizvode neke termotolerantne bakterije, poput Bac. subtilis.

Kvasac postojan na kiseline može rasti u silaži bez negativnog utjecaja na kvalitetu hrane. U pravilno položenoj fermentiranoj masi kvasci se ne razmnožavaju jako.

To je zato što ne mogu rasti na niskoj razini redoks potencijala koji u silaži stvaraju bakterije mliječne kiseline.

Razvoj bakterija maslačne kiseline povezan je sa sljedećim značajkama: oni su stroži anaerobi od kvasaca, ali su nestabilni na visoku kiselost i prestaju rasti pri pH blizu 4,75, poput većine truležnih bakterija. Akumulacija maslačne kiseline je nepoželjna, jer ima neugodan miris, a stoka slabo jede hranu koja je sadrži.
U biljnoj masi položenoj u silažu mogu se nalaziti bakterije crijevne skupine. Oni uzrokuju truležnu razgradnju bjelančevina, a šećer se pretvara u proizvode male vrijednosti za konzerviranje.

Kod normalnog odvijanja procesa siliranja, bakterije crijevne skupine brzo odumiru jer nisu otporne na kiseline.

Razmotrite dinamiku sazrijevanja silaže. Proces fermentacije može se uvjetno podijeliti u tri faze. Prvu fazu sazrijevanja fermentirane hrane karakterizira razvoj mješovite mikroflore. Na biljnoj masi počinje ubrzani razvoj raznih skupina mikroorganizama unesenih s hranom u silos. Obično je prva faza fermentacije kratkotrajna. Završetak prve ili preliminarne faze fermentacije povezan je s zakiseljavanjem okoliša, što inhibira aktivnost većine mikroflore stočne hrane. Do tog vremena u silosu se uspostavljaju anaerobni uvjeti jer se troši kisik.

U drugoj fazi, fazi glavne fermentacije, glavnu ulogu imaju bakterije mliječne kiseline, koje nastavljaju kiseliti krmivo. Većina bakterija koje ne nose spore umiru, ali bacilarni oblici u obliku spora mogu dugo trajati u fermentiranoj hrani. Na početku druge faze fermentacije u silaži obično dominiraju koke, koje kasnije zamjenjuju štapićaste bakterije mliječne kiseline koje su vrlo otporne na kiseline.

Treća faza fermentacije krmiva povezana je s postupnim odumiranjem patogena procesa mliječne kiseline u silaži koja sazrijeva. Do tog vremena se siliranje prirodno završava.

Brzina zakiseljavanja hrane ne ovisi samo o količini ugljikohidrata u njoj, već io strukturi biljnog tkiva. Što brže biljke daju sok, to se brži proces fermentacije odvija pod istim uvjetima. Brzina fermentacije je pospješena mljevenjem mase, što olakšava odvajanje soka.
O kvaliteti silirane krme svjedoči sastav organskih kiselina nakupljenih u njoj tijekom fermentacije.
Za reguliranje procesa siliranja preporučuje se nekoliko metoda. Među njima se široko koriste starter kulture bakterija mliječne kiseline. Ovi mikroorganizmi se nalaze na površini biljaka, ali u malom broju. Stoga je potrebno određeno razdoblje tijekom kojeg se bakterije mliječne kiseline intenzivno razmnožavaju, a tek tada se zamjetno očituje njihova korisna aktivnost. To se razdoblje može umjetno skratiti obogaćivanjem hrane bakterijama mliječne kiseline. Posebno je preporučljivo uvesti starter kulture kod rada s teško silažnim materijalom.

Predložena je tehnologija pripreme i uporabe bakterijskih starter kultura koje poboljšavaju kvalitetu stočne hrane. U većini slučajeva preporuča se bakterija mliječne kiseline Lactobacillus plantarum. Ponekad se ovom mikroorganizmu pridoda još neki uzročnik mliječno-kiselog vrenja. Pripremite i tekuće i suho kiselo tijesto.

Za krmiva s malom zalihom monosaharida priprema se pripravak sa Streptococcus lactis diastaticus. Ovaj mikroorganizam, za razliku od drugih bakterija mliječne kiseline, može fermentirati ne samo jednostavne ugljikohidrate, već i škrob.
Postoje prijedlozi da se siliranoj masi, siromašnoj monosaharidima, dodaju enzimski pripravci (maltaza, celulaze) koji razgrađuju polisaharide i obogaćuju hranu šećerima dostupnim bakterijama mliječne kiseline.

Kod siliranja krmiva s velikom količinom ugljikohidrata (npr. kukuruza), koja daju previše kiselu hranu, što je nepoželjno, priprema se starter od bakterija propionske kiseline. Pri njegovoj uporabi dio mliječne kiseline prelazi u propionsku i octenu kiselinu, koje slabo disociraju, pa hrana postaje manje kisela.

Osim toga, bakterije propionske kiseline proizvode značajnu količinu vitamina Bi2.
Za poboljšanje silosabilnosti teško fermentiranih krmiva predlaže se uporaba pripravka amilaze. Ovaj enzim pretvara krmni škrob u maltozu, što povećava zalihu šećera dostupnih bakterijama mliječne kiseline i pojačava zakiseljavanje hrane.
D Za teško fermentirajuća krmiva koriste se kiseli pripravci. Njihovim uvođenjem u silažnu hranu suzbija se razvoj saprofitne mikroflore prve faze fermentacije. pH (oko 4) stvoren u biljnoj masi kiselim smjesama ne sprječava razvoj bakterija mliječne kiseline, koje održavaju pH hraniva na niskoj razini.

Za konzerviranje slabo fermentirane krmiva preporučuju se i pripravci koji sadrže kalcijev formijat, metabisulfit, natrijev pirosulfit, sulfaminsku, benzojevu, mravlju kiselinu i druge tvari koje suzbijaju mikrobiološke procese u siliranoj hrani i konzerviraju je.

Hraniti silažom

Senage način čuvanja sušenog bilja, uglavnom iz obitelji mahunarki, ubranog na početku punjenja u boce pri vlažnosti od 40-50 %.

Istodobno, pH hraniva može biti prilično visok - oko 5, jer bakterije truljenja imaju niži osmotski tlak od mliječnokiselih. Kada se hrana osuši, procesi truljenja u njoj prestaju, ali uzročnici mliječno-kiselog vrenja nastavljaju djelovati. Na tome se temelji priprema sjenaže, kada se nešto osušena masa odlaže na konzerviranje, kao kod hladnog siliranja.
U djetelini, čija je vlažnost 50% i niža, razvijaju se mikrobiološki procesi. One teku to slabije, što je hrana suša. Bakterije mliječne kiseline brzo postaju dominantna mikroflora u konzerviranoj hrani. Ova skupina prilično specifičnih mikroorganizama bliska je Lactobacillus plantarum, ali se razlikuje po sposobnosti rasta u znatno sušnijem okruženju i fermentaciji škroba. Njihov razvoj u hrani dovodi do nakupljanja određene količine mliječne i octene kiseline u njoj.
Prema vrsti sjenaže dobro se čuvaju usitnjeni klipovi kukuruza namijenjeni stočnoj hrani s vlagom 2650% (optimalno 3040%).

Nedavno je Poljoprivredni institut Kuibyshev preporučio tretiranje nedovoljno osušenog sijena (sa sadržajem vlage od oko 35%) tekućim amonijakom, koji djeluje kao konzervans.

Uvođenjem amonijaka u hranu stvara se alkalna reakcija koja blokira mikrobiološke i enzimske procese. Stočnu hranu tretiranu amonijakom treba prekriti nekom vrstom izolacijskog materijala.

Neke tehnološke metode konzerviranja stočne hrane temelje se na principima koji isključuju razvoj mikrobioloških i enzimskih procesa u hrani za životinje. To je proizvodnja biljnog brašna, granulacija, briketiranje i proizvodnja smjesa uz primjenu visokih temperatura, a ponekad i visokog pritiska.

Popis korištene literature

  1. A. V. Vorobyov, Mikrobiologija, 2003.;
  2. I. B. Kotova, Mikrobiologija, 2008.;
  3. http://ru.wikipedia.org ;
  4. Rabotnova I.L., Opća mikrobiologija, Mikrobiologija, 1966;

Siliranje (fermentacija) je način konzerviranja zelene krme, pri kojem se biljna masa drži vlažna u jamama, rovovima ili posebnim objektima – silosima. Hrana, više ili manje komprimirana i izolirana od zraka, prolazi kroz fermentaciju. Poprima kiselkasti okus, postaje mekši, nešto mijenja boju (poprima smeđu boju), ali ostaje sočan.

Siliranje ima niz prednosti u odnosu na druge metode konzerviranja krme. Postoje dva načina siliranja: hladno i toplo.

Metoda hladnog siliranja nazvana je tako jer tijekom sazrijevanja silaže dolazi do umjerenog porasta temperature u njoj, koja u pojedinim slojevima krme doseže i do 40 °C, a smatra se da je optimalna temperatura 25-30 °C.

Kod takvog siliranja pokošena biljna masa se, ako je potrebno, usitnjava, stavlja do kvara u spremnik za hranu, nabija i što je moguće čvršće pokriva odozgo da se izolira od izlaganja zraku.

Kod vrućeg načina silos se puni po komadima. Zelena masa se rastresito polaže 1-2 dana u sloju od oko 1-1,5 m. Uz veliku količinu zraka u njoj se razvijaju snažni mikrobiološki i enzimski procesi, uslijed čega se temperatura hrane penje na 45°C. -50 °C. Zatim se postavlja drugi sloj iste debljine kao i prvi, a on se pak podvrgava zagrijavanju. Biljke koje se nalaze ispod i omekšane pod utjecajem visoke temperature stisnute su pod težinom novog sloja hrane. Time dolazi do uklanjanja zraka iz donjeg sloja silosa, čime se zaustavljaju aerobni procesi u njemu, a temperatura počinje padati. Tako sloj za slojem ispunjava cijeli silos. Najgornji sloj hrane je zbijen i čvrsto pokriven kako bi se zaštitio od zraka. Zbog činjenice da je silos kod metode vruće silaže obično male veličine, određeno opterećenje stavlja se na gornji sloj silaže.

Zagrijavanje biljne mase povezano je s gubitkom (ponekad značajnim) hranjivih tvari u hrani. Posebno se naglo smanjuje probavljivost njegovih proteina. Stoga se vruće siliranje ne može smatrati racionalnim načinom očuvanja biljne mase.

Hladni način siliranja je najčešći. To je zbog njegove usporedne jednostavnosti i dobre kvalitete dobivene hrane. Vruća metoda siliranja priznata je kao dopuštena samo za fermentaciju krmiva s krupnim stabljikama, niske vrijednosti, budući da zagrijavanje poboljšava njihovu ukusnost.

Siliranje je povezano s nakupljanjem kiselina u hrani, koje nastaju kao rezultat fermentacije mikroba - šećernih tvari koje tvore kiseline sadržane u biljkama. Glavnu ulogu u procesu siliranja imaju bakterije mliječne kiseline, koje iz ugljikohidrata (uglavnom iz mono- i disaharida) proizvode mliječnu i djelomično octenu kiselinu. Ove kiseline imaju ugodna okusna svojstva, dobro ih apsorbira tijelo životinje i pobuđuju njegov apetit. Bakterije mliječne kiseline smanjuju pH hraniva na 4,2-4 i niže.

Nakupljanje mliječne i octene kiseline u silaži uvjetuje njezinu sigurnost jer se bakterije truljenja i druge za silažu nepoželjne bakterije ne mogu razmnožavati u kiseloj sredini (ispod 4,5-4,7). Same bakterije mliječne kiseline relativno su otporne na kiseline. Plijesni koje podnose jako zakiseljavanje su strogi aerobi i ne mogu se razmnožavati u dobro poklopljenoj fermentiranoj hrani.

Dakle, nepropusnost i kiselost silaže su glavni čimbenici koji određuju njenu stabilnost tijekom skladištenja. Ako se iz jednog ili drugog razloga kiselost hrane smanji, to neizbježno dovodi do njenog pogoršanja, jer se stvaraju uvjeti povoljni za štetne mikrobe.

Za normalno siliranje raznih krmiva potrebno je nejednako zakiseljavanje. Ponekad 0,5% mliječna kiselina snižava pH krmiva na 4,2, tj. na vrijednost karakterističnu za dobru silažu. U drugim slučajevima potrebno je 2% iste kiseline. Takva fluktuacija ovisi o različitoj manifestaciji puferskih svojstava pojedinih komponenti biljnog soka. Mehanizam djelovanja pufera je da se u njihovoj prisutnosti neutralizira značajan dio vodikovih iona. Stoga, usprkos nakupljanju kiseline, pH medija se gotovo ne smanjuje dok se ne potroši sav pufer. U silosu se formira zaliha takozvanih puferiranih kiselina. Ulogu pufera mogu igrati razne soli i neke organske tvari (na primjer, bjelančevine) koje ulaze u sastav biljnog soka. Hrana s većim puferom mora imati više šećera kako bi proizvela dobru silažu nego ona s manje pufera. Posljedično, održivost biljaka određena je ne samo njihovim bogatstvom šećerima, već i njihovim specifičnim puferskim svojstvima. Na temelju puferskog kapaciteta biljnog soka, teoretski se mogu izračunati norme šećera potrebne za uspješno siliranje različitih biljnih materijala.

Puferski kapacitet biljnog soka izravno ovisi o količini proteina u njima. Stoga je većinu mahunarki teško silirati, budući da imaju relativno malo šećera (8-6%), a mnogo bjelančevina (20-40%). Odličan silažni usjev je kukuruz. Njegove stabljike i klipovi sadrže 8-10% bjelančevina i oko 12% šećera. Dobro se silira suncokret u kojem, iako ima dosta bjelančevina (oko 20%), ima dovoljno ugljikohidrata (više od 20%). Navedene brojke temelje se na suhoj tvari.

Poznavajući kapacitet puferiranja krmiva i njegov kemijski sastav, moguće je riješiti problem silosabilnosti pojedinog pogona. U osnovi, silaža je povezana s opskrbom mono- i disaharidima, koji osiguravaju potrebno zakiseljavanje određene krmiva. Njihov minimalni sadržaj za dovođenje pH hrane na 4,2 može se nazvati minimumom šećera. Prema A. A. Zubrilinu, ako hrana sadrži više šećera nego što pokazuje izračunati minimum šećera, onda će se dobro silirati.

Tehnički, nije teško odrediti minimum šećera. Titracijom se utvrđuje potrebna količina kiselina za zakiseljavanje ispitnog uzorka hrane za pH 4,2. Zatim odredite količinu jednostavnih šećera u hrani. Uz pretpostavku da se oko 60% šećera u stočnoj hrani pretvara u mliječnu kiselinu, nije teško izračunati ima li dovoljno šećera na raspolaganju za ispravno zakiseljavanje hrane.

Kako bi se poboljšala silosabilnost, krmiva s malim udjelom ugljikohidrata miješaju se s krmivima koja sadrže puno šećera. Također je moguće poboljšati sastav silažne krme dodavanjem melase-melase prema određenom izračunu.

Neka hrana ima previše ugljikohidrata. Prilikom siliranja takvih krmiva dolazi do prekomjerne kiselosti (fenomen peroksidacije silaže). Životinje nerado jedu previše kiselu hranu. Kako bi se spriječilo zakiseljavanje silaže, krmiva koja sadrže puno šećera miješaju se s krmivima s niskim udjelom ugljikohidrata. Kiselo krmivo može se neutralizirati dodavanjem CaCO3.

Tijekom fermentacije dio proteina se pretvara u aminokiseline. Na temelju eksperimentalnih podataka trenutno se vjeruje da je takva transformacija uglavnom povezana s aktivnošću enzima biljnog tkiva, a ne bakterija.

Budući da se aminokiseline dobro apsorbiraju u životinjskom organizmu, djelomična pretvorba bjelančevina u aminokiseline ne bi trebala utjecati na smanjenje hranjive vrijednosti silirane mase. U dobroj silaži nema duboke razgradnje proteina uz stvaranje amonijaka.

Prilikom siliranja dolazi do djelomičnog gubitka vitamina u fermentiranoj masi, ali u pravilu znatno manjeg nego kod sušenja sijena.

Ukupan gubitak krmne tvari kod hladnog siliranja mnogo je manji nego kod vrućeg siliranja. U prvom slučaju, oni i - trebaju prelaziti 10-15%, u drugom dosežu 30% ili više.

Među bakterijama mliječne kiseline postoje koki i štapići koji ne stvaraju spore. Neke od ovih bakterija stvaraju uglavnom mliječnu kiselinu iz šećera, a samo tragove drugih organskih kiselina (homofermentativni oblici). Drugi, osim mliječne kiseline, nakupljaju zamjetne količine octene kiseline (heteroenzimatski oblici).

Tipični predstavnici prve skupine bakterija su Streptococcus lactis, Str. thermophilus, Streptobacterium plantarum, a od predstavnika drugog - Lactobacillus brevis i Betabacterium breve. Ovi mikrobi su fakultativni anaerobi.

Na prirodu proizvoda koje stvaraju bakterije mliječne kiseline utječu ne samo biokemijske karakteristike jedne ili druge kulture, već i sastav hranjivog medija. Na primjer, ako se ne fermentira heksoza, već pentoza, tada jedan produkt fermentacije ima tri atoma ugljika, a drugi samo dva (prva tvar je mliječna kiselina, druga je octena). U takvom slučaju, proces fermentacije može se približno izraziti sljedećom jednadžbom;

6S5N10O 5 → 8S3N6O3 + 3S2N4O2

U biljnim sirovinama postoje pentozani, koji hidrolizom daju pentoze. Stoga, čak i uz normalno sazrijevanje silaže, obično nakuplja određenu količinu octene kiseline, koju također stvaraju heterofermentativne bakterije mliječne kiseline iz heksoza.

Većina bakterija mliječne kiseline živi na temperaturi od 7-42°C (optimum je oko 25-30°C). Neke su kulture aktivne pri niskim temperaturama (oko 5°C). Uočeno je da se prilikom zagrijavanja silaže na 60-65°C u njoj nakuplja mliječna kiselina koju proizvode neke termotolerantne bakterije, poput Bac. subtilis.

Kvasac postojan na kiseline može rasti u silaži bez negativnog utjecaja na kvalitetu hrane. U pravilno položenoj fermentiranoj masi kvasci se ne razmnožavaju jako. To je zbog činjenice da ne mogu rasti na niskoj razini redoks potencijala koji u silaži stvaraju bakterije mliječne kiseline. Kritične točke H2 za bakterije maslačne kiseline su oko 3, za bakterije mliječne kiseline - 6-9, za kvasce - 12-14.

Razvoj maslačnih bakterija povezan je sa sljedećim značajkama. Oni su striktniji anaerobi od kvasaca, ali nisu tolerantni na visoku kiselost i prestat će rasti pri pH vrijednosti blizu 4,7-5, kao većina bakterija truljenja. Akumulacija maslačne kiseline je nepoželjna, jer ima neugodan miris, a stoka slabo jede hranu koja je sadrži. Uz jaku fermentaciju hrane, osim maslačne kiseline, nakupljaju se štetni proizvodi kao što su amini, amonijak itd.

U biljnoj masi položenoj u silažu mogu se nalaziti bakterije crijevne skupine. Oni uzrokuju truležnu razgradnju bjelančevina, a šećer se pretvara u proizvode male vrijednosti za konzerviranje.

Kod normalnog odvijanja procesa siliranja, bakterije crijevne skupine brzo odumiru jer nisu otporne na kiseline.

Razmotrite dinamiku sazrijevanja silaže. Proces fermentacije može se uvjetno podijeliti u tri faze. Prvu fazu sazrijevanja fermentirane hrane karakterizira razvoj mješovite mikroflore. Na biljnoj masi počinje ubrzani razvoj raznih skupina mikroorganizama unesenih s hranom u silos. Obično je prva faza fermentacije kratkotrajna. Završetak prve ili preliminarne faze fermentacije povezan je s zakiseljavanjem okoliša, što inhibira aktivnost većine mikroflore stočne hrane. Do tog vremena u silosu se uspostavljaju anaerobni uvjeti jer se troši kisik.

U drugoj fazi - fazi glavnog vrenja - glavnu ulogu imaju bakterije mliječne kiseline, koje nastavljaju kiseliti krmivo. Većina bakterija koje ne nose spore umiru, ali bacilarni oblici u obliku spora mogu dugo trajati u fermentiranoj hrani. Na početku druge faze fermentacije u silaži obično dominiraju koke, koje kasnije zamjenjuju štapićaste bakterije mliječne kiseline koje su vrlo otporne na kiseline.

Treća faza fermentacije krmiva (konačna) povezana je s postupnim odumiranjem uzročnika procesa mliječne kiseline u silaži koja sazrijeva. Do tog vremena se siliranje prirodno završava. Brzina zakiseljavanja hrane ne ovisi samo o količini ugljikohidrata u njoj, već io strukturi biljnog tkiva. Što brže biljke daju sok, to se brži proces fermentacije odvija pod istim uvjetima. Brzina fermentacije je pospješena mljevenjem mase, što olakšava odvajanje soka.

Za reguliranje procesa siliranja preporučuje se nekoliko metoda. Među njima ističemo korištenje starter kultura bakterija mliječne kiseline. Ovi mikroorganizmi se nalaze na površini biljaka, ali u malom broju. Stoga je potrebno određeno razdoblje tijekom kojeg se bakterije mliječne kiseline intenzivno razmnožavaju, a tek tada se zamjetno očituje njihova korisna aktivnost. To se razdoblje može umjetno skratiti obogaćivanjem hrane bakterijama mliječne kiseline. Posebno je preporučljivo uvesti starter kulture kod rada s teško silažnim materijalom.

Predložena je tehnologija pripreme i uporabe bakterijskih starter kultura koje poboljšavaju kvalitetu stočne hrane. U većini slučajeva preporuča se bakterija mliječne kiseline Lactobacillus plantarum. Ponekad se ovom mikroorganizmu pridoda još neki uzročnik mliječno-kiselog vrenja. Pripremite i tekuće i suho kiselo tijesto.

Za krmiva s malom zalihom monosaharida priprema se pripravak sa Streptococcus lactis diastaticus. Ovaj mikroorganizam, za razliku od drugih bakterija mliječne kiseline, može fermentirati ne samo jednostavne ugljikohidrate, već i škrob.

Postoje prijedlozi da se siliranoj masi, siromašnoj monosaharidima, dodaju enzimski pripravci (maltaza, celulaze) koji razgrađuju polisaharide i obogaćuju hranu šećerima dostupnim bakterijama mliječne kiseline.

Kod siliranja krmiva s velikom količinom ugljikohidrata (npr. kukuruza), koja daju previše kiselu hranu, što je nepoželjno, priprema se starter od bakterija propionske kiseline. Pri njegovoj uporabi dio mliječne kiseline prelazi u propionsku i octenu kiselinu, koje slabo disociraju, pa hrana postaje manje kisela. Osim toga, bakterije propionske kiseline proizvode značajne količine vitamina B12.

Za poboljšanje silosabilnosti teško fermentiranih krmiva predlaže se uporaba pripravka amilaze. Ovaj enzim pretvara krmni škrob u maltozu, što povećava zalihu šećera dostupnih bakterijama mliječne kiseline i pojačava zakiseljavanje hrane.

Također se preporučuju smjese puferskih kiselina koje uključuju razne mineralne kiseline. U CIS-u se predlažu lijekovi AAZ, VIC itd. U inozemstvu se koriste AIV, Penrhesta itd. Uspješno se koriste organske kiseline (na primjer, mravlja).

Za teško fermentirajuću stočnu hranu koriste se kiseli pripravci. Njihovim uvođenjem u silažnu hranu suzbija se razvoj saprofitne mikroflore prve faze fermentacije. pH (oko 4) stvoren u biljnoj masi kiselim smjesama ne sprječava razvoj bakterija mliječne kiseline, koje održavaju pH hraniva na niskoj razini.

Za konzerviranje slabo fermentirane krmiva preporučuju se i pripravci koji sadrže kalcijev formijat, metabisulfit, natrijev pirosulfit, sulfaminsku, benzojevu, mravlju kiselinu i druge tvari koje suzbijaju mikrobiološke procese u siliranoj hrani i konzerviraju je.

Gore navedeni podaci odnose se na čuvanje hrane s normalnim sadržajem vlage (oko 75%). Ako je vlažnost konzervirane mase znatno niža (50-65%), tada i uz manjak ugljikohidrata dolazi do dobre fermentacije i dobiva se visokokvalitetna hrana - sjenaža. Istodobno, pH hraniva može biti prilično visok - oko 5, jer bakterije truljenja imaju niži osmotski tlak od mliječnokiselih. Kada se hrana osuši, procesi truljenja u njoj prestaju, ali uzročnici mliječno-kiselog vrenja nastavljaju djelovati. Na tome se temelji priprema sjenaže, kada se nešto osušena masa odlaže na konzerviranje, kao kod hladnog siliranja.

Istraživanja autora pokazala su da se mikrobiološki procesi odvijaju u djetelini čija je vlažnost iznosila 50% i niže. One teku to slabije, što je hrana suša. Bakterije mliječne kiseline brzo postaju dominantna mikroflora u konzerviranoj hrani. Ova skupina prilično specifičnih mikroorganizama bliska je Lactobacillus plantarum, ali se razlikuje po sposobnosti rasta u znatno sušnijem okruženju i fermentaciji škroba. Njihov razvoj u hrani dovodi do nakupljanja određene količine mliječne i octene kiseline u njoj.

Prema vrsti sjenaže dobro se čuvaju usitnjeni klipovi kukuruza namijenjeni stočnoj hrani s vlagom 26-50% (optimalno 30-40%).

Nedavno je Poljoprivredni institut Kuibyshev preporučio tretiranje nedovoljno osušenog sijena (sa sadržajem vlage od oko 35%) tekućim amonijakom, koji djeluje kao konzervans.

Uvođenjem amonijaka u hranu stvara se alkalna reakcija koja blokira mikrobiološke i enzimske procese. Stočnu hranu tretiranu amonijakom treba prekriti nekom vrstom izolacijskog materijala.

Neke tehnološke metode konzerviranja stočne hrane temelje se na principima koji isključuju razvoj mikrobioloških i enzimskih procesa u hrani za životinje. To je proizvodnja biljnog brašna, granulacija, briketiranje i proizvodnja smjesa uz primjenu visokih temperatura, a ponekad i visokog pritiska.

Dom Kod djece

Mikrobiologija spravljanja običnog sijena.

"T. V. Solyanik, M. A. Glaskovich

-- [ Stranica 1 ] --

MINISTARSTVO POLJOPRIVREDE

I HRANA REPUBLIKE BJELORUSIJE

GLAVNA UPRAVA ZA OBRAZOVANJE, ZNANOST I KADROVE

obrazovna ustanova

„BJELORUSKA DRŽAVA

POLJOPRIVREDNA AKADEMIJA"

T. V. Solyanik, M. A. Glaskovich

MIKROBIOLOGIJA

MIKROBIOLOGIJA HRANE

ŽIVOTINJSKI I BILJNI

PODRIJETLO

Preporučeno od strane Nastavno-metodičke udruge za obrazovanje u području poljoprivrede kao kolegij za studente visokih učilišta koji studiraju na specijalnosti 1-74 03 01 .2014 (protokol br. 7) i Znanstveno-metodološko vijeće BSAA 03.12.2014 (protokol br. 3)

Kandidat poljoprivrednih znanosti, izvanredni profesor T. V. Solyanik;

Kandidat poljoprivrednih znanosti, izvanredni profesor M. A. Glaskovich

Recenzenti:

Kandidat veterinarskih znanosti, izvanredni profesor Odjela za mikrobiologiju i virusologiju EE "VGAVM" P. P. Krasochko;

Kandidat poljoprivrednih znanosti, izvanredni profesor Odjela za svinjogojstvo i stočarstvo malih životinja EE "BSAA" N. M. Bylitsky Solyanik, T. V.



S60 Mikrobiologija. Mikrobiologija hrane za životinje životinjskog i biljnog podrijetla: tečaj predavanja / T. V. Solyanik, M. A. Glaskovich. - Gorki: BSHA, 2014. - 76 str. : ilustr.

ISBN 978-985-467-536-7.

U skladu s programom discipline sastavljen je tečaj predavanja za studente visokoškolskih ustanova. Na predavanjima se detaljno govorilo o kemijskom sastavu stočne hrane, karakteristikama mikroorganizama, razmjerima gubitaka u konzerviranoj stočnoj hrani uzrokovanih djelovanjem mikroorganizama. Na pristupačan način prikazana je mikrobiološka analiza krmiva, mikroflora silirane i zelene mase, aerobna razgradnja krmiva, metode proučavanja uzročnika sekundarne fermentacije.

Za studente visokih učilišta koji studiraju u specijalnosti 1-74 03 01 Zootehnika.

UDK 636.085:579.67(075.8) LBC 36-1Ya73 ISBN 978-985-467-536-7 © Bjeloruska državna poljoprivredna akademija, 2014.

UVOD

Stočna hrana u stočarstvu ili peradarstvu čini oko 70% cijene gotovih proizvoda, pa svaki vlasnik zainteresiran za visokoprofitabilnu poljoprivredu brine prije svega o njima. Nikome nije strano da krmu treba ne samo pravodobno uzgojiti i sakupiti s polja, već i pravilno pripremiti.

Sijeno (slama) se sprema u stogove, bale ili skladišta za sijeno. Neka sočna krmiva (korijenasti usjevi) zahtijevaju toplo skladištenje ili dobro izolirane hrpe (hrpe). Koncentrirana krmiva zahtijevaju smjese ili elevatore. Najteži problem je priprema i skladištenje sočne hrane - silaže i sjenaže.

Treba imati na umu da ove dvije vrste krmiva čine preko 50% hranidbene vrijednosti zimske prehrane preživača. A u intenzivnom stočarstvu, prelaskom na tekuću hranidbu životinja istom vrstom obroka, ta krmiva postaju glavna komponenta obroka tijekom cijele godine. Dakle, kvaliteta silaže i sjenaže je kvaliteta i učinkovitost hranidbe životinja općenito.

Očuvanje krme trenutno je popraćeno velikim gubicima. Ako se siliranje pravilno provodi, npr. u horizontalnim silosima, gubici su prosječno oko 20%. Uz nekvalificirani rad, oni se značajno povećavaju. Na temelju brojnih istraživanja može se ustvrditi da se količina gubitaka izazvanih djelovanjem mikroorganizama krmiva često podcjenjuje. Prilikom sastavljanja bilance krmne smjese predviđaju se samo “neizbježni” gubici kao posljedica “raspada”. Međutim, treba imati na umu da se silaža, koja je bila ispod sloja pokvarenog kao rezultat sekundarne fermentacije (gornji i bočni slojevi), odlikuje visokim pH i nije prikladna za hranjenje životinja. Sjenaža, podvrgnuta samozagrijavanju kao rezultat aerobnih procesa, gubi svoju hranjivu vrijednost za polovinu. Plijesnivo sijeno, žitarice, kisela silaža uzročnici su mnogih bolesti domaćih životinja.

Čak i pod povoljnim uvjetima prirodne fermentacije, tijekom konzerviranja zelenih biljaka gubi se mnogo hranjivih tvari. Uklanjanje ovih gubitaka je ekvivalentno povećanju prinosa krmnog bilja za 20-25%. Osim toga, uobičajena konvencionalna metoda siliranja nije prikladna za trave s visokim udjelom proteina (više od 17% u suhoj tvari).

Prema suvremenim shvaćanjima, uspjeh konzerviranja određen je ukupnim djelovanjem glavnih konzervirajućih čimbenika: aktivne kiselosti, toksičnog djelovanja molekule mliječne kiseline i specifičnih antibiotskih tvari bakterija mliječne kiseline. Bakterije mliječne kiseline korisne su i po tome što su proizvođači, osim mliječne kiseline i antibiotika, i drugih biološki aktivnih tvari (vitamina, aminokiselina i dr.). Sve to dovodi do potrage za novim ekološki prihvatljivim biološkim proizvodima na bazi bakterija mliječne kiseline koji reguliraju i vode mikrobiološki proces na putu željene homofermentativne mliječno-kisele fermentacije.

Proizvodno vrijedni sojevi bakterija mliječne kiseline moraju biti sposobni aktivno se razmnožavati, karakterizirati ih visoka energija stvaranja kiseline, odnosno stvarati veliku količinu mliječne kiseline, dovoljnu za brzo stabilno povećanje kiselosti konzervirane hrane.

Poznavanje fizioloških i biokemijskih karakteristika pojedinih skupina mikroorganizama koji se nalaze u konzerviranoj hrani za životinje, te čimbenika koji ograničavaju ili potiču njihov razvoj, nužno je kako bi se otklonile pogreške u pripremi, čuvanju i hranidbi konzervirane hrane.

1. UPOZNAVANJE SA ZNAČAJKAMA KEM

SASTAV I HRANLJIVOST KRMIVA

–  –  –

Sijeno su osušene stabljike i listovi zeljastih biljaka posječeni u zeleno do pune prirodne zrelosti. Koristi se kao hrana za domaće životinje u područjima gdje klimatski uvjeti ne dopuštaju cjelogodišnju upotrebu svježe hrane. Kosidba sijena naziva se sjenokoša.

Sijeno je jedno od glavnih krmiva za goveda, ovce, konje tijekom perioda stajanja. Visokokvalitetno sijeno služi kao izvor proteina, vlakana, šećera, minerala, vitamina D i skupine B. Za žetvu sijena koriste se usjevi višegodišnjih i jednogodišnjih mahunarki i žitnih trava, njihove mješavine, kao i sastojine trava prirodnih krmnih površina. koristi se.

Hranjiva vrijednost sijena uvelike ovisi o njegovoj kvaliteti. Glavni uvjet za dobivanje kvalitetnog sijena je pravovremena košnja trave. Načini i trajanje sušenja trava značajno utječu na kvalitetu sijena. Rasuto i prešano sijeno žanje se metodom poljskog sušenja. Korištenje pljoštenja bilja i sušenje osušenog bilja metodom aktivne ventilacije omogućuje smanjenje vremena sušenja bilja. Aktivna ventilacija (kod žetve rastresitog zdrobljenog i nezdrobljenog, kao i prešanog sijena) omogućuje povećanje ukupnog skupljanja hranjivih tvari za 10-15%, povećanje hranjive vrijednosti sijena za 20% i smanjenje gubitaka karotena za 2 puta.

Koristi se konzerviranje vlažnog sijena tekućim amonijakom, što omogućuje povećanje hranjive vrijednosti sijena za 10-25%.

Opća procjena sijena i njegova klasifikacija provodi se u skladu s GOST 4808–87. Za opću ocjenu sijena uzimaju se sljedeći pokazatelji: vegetacijska faza trava u vrijeme žetve, boja, miris, sadržaj suhe tvari u sijenu, štetne i otrovne biljke te mineralne primjese. Ocjena kakvoće sijena utvrđuje se na temelju organoleptičkih pokazatelja i laboratorijskih ispitivanja.

Organoleptičkim pokazateljima utvrđuje se opće stanje sijena: izgled, miris, znakovi kvarenja, koji karakteriziraju kvalitetu njegove žetve i skladištenja. Kvaliteta sijena mora biti u skladu sa zahtjevima GOST 4808–87. Prema GOST-u vrši se opća procjena sijena i njegova klasifikacija.

Ovisno o botaničkom sastavu sijeno se dijeli na sljedeće vrste:

1) mahunarke sa sjemenom (mahunarke više od 60%);

2) sjemenske žitarice (žitarice više od 60% i mahunarke ne manje od 20%);

3) sjemenske mahunarke i žitarice (mahunarke od 20 do 60%);

4) prirodna krmna zemljišta (žitarice, leguminoze i dr.).

Za sijeno, sijane trave i trave prirodnih krmnih površina moraju se kositi:

1) leguminoze - u fazi pupanja, ali ne kasnije od faze punog cvatnje;

2) žitarice - u fazi klasanja, ali najkasnije do početka cvatnje.

Boja sijena treba biti:

1) mahunarke sa sjemenkama (mahunarke-žitarice) - od zelene i zelenkasto-žute do svijetlosmeđe;

2) sjemenske žitarice i sijeno s prirodnih krmnih sjenokoša - od zelene do žutozelene.

Sijeno od sjemenskih trava i trava prirodnih krmnih površina ne smije imati miris po pljesnivu, pljesnivu i truležnom mirisu.

U sijenu od sijanih trava i trava prirodnih krmnih površina, maseni udio suhe tvari treba biti najmanje 83% (vlažnost - ne više od 17%).

Sijeno sjemenskih trava i trava prirodnih površina dijeli se u tri klase ovisno o sadržaju sirovih bjelančevina i metaboličke energije ili RFU (Tablica 1).

Štetne i otrovne biljke nisu dopuštene u sijenu napravljenom od ljekovitog bilja. Sadržaj štetnih i otrovnih biljaka nije dopušten u sijenu prirodne stočne hrane (za 1. klasu - ne više od 0,5%, za 2. i 3. klasu - ne više od 1%).

Tablica 1. Zahtjevi za sijeno (GOST 4808–87)

–  –  –

Poboljšanje kvalitete stočne hrane jedna je od najstvarnijih i najopipljivijih rezervi u stvaranju čvrste krmne baze za stoku u zemlji. Problem poboljšanja kvalitete stočne hrane je složen i podrazumijeva dobivanje sirovina s visokim udjelom hranjivih tvari i ekološki prihvatljivih.

Potpuno zadovoljenje potreba za stočnom hranom može se postići ne samo povećanjem prinosa krmnog bilja, već i poboljšanjem kakvoće, smanjenjem gubitka hranjivih tvari stočne hrane u procesu žetve, prerade i skladištenja. Uspjeh poslovanja uvelike ovisi o izboru najučinkovitije metode očuvanja zelenih biljaka.

Posljednjih godina postala je raširena takva metoda konzerviranja kao što je sjenaža, koja omogućuje očuvanje hrane s minimalnim gubitkom hranjivih tvari, osobito ugljikohidratnog dijela. Pravilno pripremljena sjenaža je hrana od biljaka ubranih u ranim fazama vegetacije (uglavnom mahunarki), osušenih na sadržaj vlage od 45-55% i uskladištenih u anaerobnim uvjetima (bez pristupa zraka). U skladu s osnovnim tehnološkim zahtjevima za polaganje i skladištenje sjenaže, u pravilu je stočna hrana visoke kakvoće karakterističnog kemijskog sastava i hranjive vrijednosti.

Tehnologija pripreme sjenaže sastoji se od sljedećih sekvencijalno izvedenih operacija: košnja i ravnanje trava (leguminoza); venuće i grabljenje u role; izbor; mljevenje i utovar u vozila; prijevoz i istovar u skladištu;

pažljivo nabijanje (u rovovima) i pouzdano sklonište.

Sjenaža se, ovisno o botaničkom sastavu i sadržaju vlage u biljkama usitnjenim do 3 cm, dijeli na sljedeće vrste:

1) sjenaža od mahunarki i žitno-leguminoznih trava, osušena do sadržaja vlage od 45-55%;

2) sjenaža od žitarica i žitno-leguminoznih trava, osušena do sadržaja vlage 40-55%.

Sjenaža je podijeljena u tri klase u skladu sa zahtjevima GOST 23637–90 (Tablica 2).

Biljke za spravljanje sjenaže treba kositi u sljedećim fazama razvoja:

Višegodišnje leguminozne trave - u fazi pupanja, ali najkasnije do početka cvatnje;

Višegodišnje žitarice - na kraju faze izbijanja u cjevčicu prije faze početka klasanja;

Višegodišnje travne smjese kose se u fazama prevladavajuće navedene komponente.

–  –  –

Napomena: Norme se utvrđuju uzimajući u obzir da se klase sjenaže određuju najranije 30 dana nakon hermetičkog zaklona mase položene u rov ili toranj, a najkasnije 15 dana prije početka hranjenja gotove sjenaže životinje .

Jednogodišnje mahunarke, leguminozno-žitarice i njihove mješavine kosi se ne prije formiranja boba u dva ili tri donja sloja. Sjenaža treba imati karakterističan miris, bez sluzave konzistencije.

Plijesan nije dopuštena. Maseni udio pepela netopivog u klorovodičnoj kiselini ne smije biti veći od 3%.

1.3. Kemijski sastav i hranjiva vrijednost silaže i silaže Silaža je krmivo dobiveno od svježe pokošene ili osušene mase, konzervirane u anaerobnim uvjetima s organskim kiselinama ili konzervansima nastalim pritom.

Siliranje je fermentacija sočne mase biljaka organskim kiselinama, uglavnom mliječnom. Vlažnost silosa treba biti 65-75%. Kako bi se spriječilo truljenje hrane, zrak se uklanja iz postavljene mase pažljivim zbijanjem.

Ne siliraju sve biljke jednako dobro.

U lake za siliranje ubrajaju se: kukuruz požnjeven u fazi mliječno-voštane zrelosti; sirak - tijekom razdoblja voštane zrelosti zrna;

suncokret, sakupljen tijekom cvatnje košara iz trećeg dijela biljke; žitne trave kose se na početku klasanja; smjese graha i žitarica, stolni i stočni kupus, uljana repica, repa, bundeva, mrkva, stočna lubenica, ostaci livadskih trava; trska i trska ubrana prije cvatnje; vrhovi cikle i mrkve.

Biljke koje se teško osipaju: djetelina, lucerna, slatka djetelina, esparzeta, grahorica, šaš, trstika i trstika, beru se u razdoblju cvatnje. Ove biljke je najbolje saditi u smjesi sa biljkama koje se lako siliraju u omjeru 1:1.

Silaža je vrsta silaže napravljena od začinskog bilja osušenog na sadržaj vlage od 60,1-70,0%. Silažom se smatra i hrana pripremljena jednoličnim miješanjem i spljoštenjem usitnjenih svježe rezanih mahunarki sa žitaricama osušenim na vlažnost 40-45%, u omjeru 1:1-1,3:1,0. Po sadržaju suhe tvari (30,0-39,9%) silaža zauzima srednji položaj između svježe pokošene silaže i sjenaže.

Silaža se, ovisno o botaničkom sastavu biljaka i tehnologiji pripreme, dijeli na sljedeće vrste: silaža od kukuruza, silaža od jednogodišnjih i višegodišnjih biljaka i silaža.

Silaža se može pripremati sa ili bez sredstava za obogaćivanje dušika, sa ili bez konzervansa i dodataka za upijanje vlage (slama, pljeva i dr.), sa ili bez sušenja zelene mase.

Krmno bilje namijenjeno pripremi silaže potrebno je žeti tijekom sljedećih vegetacijskih sezona:

Kukuruz - u fazi voštane i mliječno-voštane zrelosti zrna;

dopuštena je žetva kukuruza u ranijim fazama u ponovljenim usjevima i na područjima gdje ovaj usjev zbog klimatskih uvjeta ne može doseći te faze;

Suncokret - u fazi početka cvatnje;

Lupin - u fazi sjajnih boba;

Višegodišnje leguminozne trave - u fazi pupanja - početak cvatnje;

Žitne trave - na kraju faze izlaska u cjevčicu - početak klasanja (metličenje);

Travne smjese višegodišnjih leguminoza i žitnih trava – u navedenim fazama vegetacije pretežne komponente;

Godišnje mahunarsko-travne smjese - u fazi voštane zrelosti sjemena u dva ili tri niža sloja mahunarki;

Jednogodišnje žitne i žitno-zrnaste smjese – u fazi mliječne zrelosti zrna.

Silaža treba imati ugodan voćni miris ukiseljenog povrća, boju karakterističnu za sirovinu i teksturu bez sluzi. Plijesan nije dopuštena.

Maksimalni sadržaj u silosu je dopušten: nitrati - 500 mg / kg, nitriti - 10 mg / kg.

Maksimalno dopuštene razine teških metala, mg/kg: živa - 0,06; kadmij - 0,3; olovo - 5,0; bakar - 30,0; cink - 50,0; željezo - 100,0; nikal - 3,0; fluor - 20,0; kobalt - 1,0; molibden - 2,0; jod - 2,0.

Preostala količina pesticida ne smije prelaziti dopuštene razine.

Silaža od krmnog bilja dijeli se u četiri klase: najviša, prva, druga i treća. Kukuruzna silaža mora ispunjavati zahtjeve dane u tablici. 3.

Silaža jednogodišnjih i višegodišnjih svježe pokošenih i osušenih biljaka mora ispunjavati zahtjeve navedene u tablici. 4 i 5.

Kvaliteta silaže od krmnog bilja ocjenjuje se najkasnije 30 dana nakon hermetičkog zatvaranja mase u skladištu, a najkasnije 15 dana prije početka hranidbe životinja.

–  –  –

* Zone uključuju regije: prva - Brest i Gomel; u drugom (središnjem) - Grodno, Minsk i Mogilev;

u trećem (sjevernom) - Vitebsk.

Tablica 4. Značajke razreda kakvoće silaže jednogodišnjih i višegodišnjih svježe pokošenih i osušenih biljaka

–  –  –

Napomene: 1. U silosu konzerviranom natrijevim pirosulfitom pH se ne određuje.

2. U silaži konzerviranoj natrijevim pirosulfitom, propionskom kiselinom i njezinim smjesama s drugim kiselinama, maseni udio maslačne kiseline se ne određuje.

3. Silaža od slame nije ocjenjena najvišom ocjenom.

–  –  –

2. KRATAK OPIS

HRANITI MIKROORGANIZME

2.1. Epifitna mikroflora, njen sastav i značajke Epifitna mikroflora su mikroorganizmi koji se nalaze na površini rastućih biljaka. Njegov kvantitativni i kvalitativni (vrstski) sastav vrlo je različit i ovisi o dobu godine, lokalitetu, vrsti i stupnju razvoja biljaka, stupnju njihove onečišćenosti i mnogim drugim uvjetima. Tako je sljedeći broj mikroorganizama po 1 g mokre mase bio: svježe travnjačke trave - 16.000, lucerne - 1.600.000, kukuruza - 17.260.000.

Raznolika mikroflora sadrži relativno mali broj bakterija mliječne kiseline (tablica 6).

Tablica 6. Kvantitativni i kvalitativni sastav mikroorganizama, stanica/g

–  –  –

U 1 g lucerne bilo je oko 1,6 milijuna mikroorganizama, ali među njima samo 10 bakterija mliječne kiseline. Dakle, na 1 poželjan mikroorganizam dolazilo je 160 000 nepoželjnih. Izuzetak je kukuruz. Na 1 g svježe mase ove biljke bilo je više od 100.000 bakterija mliječne kiseline. Čini se da se dobra silaža kukuruza objašnjava kako povoljnim odnosom hraniva tako i većom zastupljenošću bakterija mliječne kiseline. Isti čimbenici određuju dobro silažiranje i drugih krmiva s visokim sadržajem šećera (repin vršak, proso, itd.).

Dakle, na biljkama postoji ogroman broj raznih mikroorganizama, ali je taj broj neznatan u usporedbi s gustoćom mikroorganizama nakon polaganja i tijekom skladištenja u određenom skladištu.

2.2. Mikroflora sijena i mokrog zrna

Najvažniji zadatak proizvodnje krme je održavanje dobre kakvoće krme. Postoji niz razloga za gubitak hranjivih tvari, smanjenje okusa i tehnoloških svojstava hrane za životinje.

Najčešći način očuvanja zelene mase i druge hrane je sušenje. Sušenje sijena provodi se na različite načine - u otkosima, otkosima, šokovima, na vješalicama itd. Čak i pri suhom vremenu i brzom sušenju neizbježan je određeni gubitak hranjivih tvari u hrani, jer se u biljci nastavlja disanje i drugi enzimski procesi. masa. U slučaju dužeg ili manje dugotrajnog sušenja, uloga navedenih procesa uvelike raste, a to opet dovodi do povećanja gubitaka, koji su u velikoj mjeri povezani s razmnožavanjem mikroorganizama na mokroj biljnoj masi. Da bi se ograničio gubitak hranjivih tvari, oni imaju tendenciju da koriste umjetno sušenje sijena, koristeći prisilnu ventilaciju atmosferskim ili grijanim zrakom.

Sušenjem hrane za životinje postupno se smanjuje broj vitalnih mikroorganizama u njima. Ipak, na visokokvalitetnoj hrani biljnog podrijetla uvijek se može naći veći ili manji broj mikrobnih stanica karakterističnih za epifitnu mikrofloru, kao i drugih mikroorganizama koji ovdje dospiju iz tla i zraka. Oni su u anabiotskom stanju.

Kada se uskladištena hrana navlaži, u njoj se ubrzano odvijaju mikrobiološki procesi i istodobno raste temperatura. Ovaj fenomen, nazvan samozagrijavanje (termogeneza), povezan je s vitalnom aktivnošću mikroflore.

Mikroorganizmi koriste u sintetske svrhe ne više od 5-10% energije hranjivih tvari koje konzumiraju. Ostatak energije otpušta se u okoliš uglavnom u obliku topline. Dakle, termogeneza uglavnom ovisi o nepotpunom iskorištavanju energije koju mikroorganizmi oslobađaju tijekom svojih biokemijskih procesa.

Fenomen termogeneze postaje opipljiv samo u uvjetima otežanog prijenosa topline. Inače se toplina odvodi iz okoline u kojoj se razmnožavaju mikroorganizmi, a da se podloga ne zagrije. Stoga se u praksi zagrijavanje bilježi samo kod značajnijih nakupina raznih materijala, odnosno takvih masa u kojima može doći do nakupljanja topline.

Tijekom samozagrijavanja biljne mase uočava se izrazita promjena mikroflore. Prvo se mezofilni mikroorganizmi množe u masi koja se zagrijava. S porastom temperature zamjenjuju ih termofili, koji pridonose povećanju temperature organskih tvari, jer imaju izuzetnu stopu razmnožavanja.

Jako zagrijavanje dovoljno suhe i porozne mase može uzrokovati njeno pougljenje i stvaranje zapaljivih plinova, poput metana i vodika, koji se adsorbiraju na poroznu površinu pougljenjenih biljnih čestica, uslijed čega može doći do samozapaljenja. Vrlo je vjerojatno da spojevi željeza igraju ulogu katalizatora tijekom paljenja. Do paljenja dolazi samo u prisustvu zraka i samo ako masa nije dovoljno zbijena. Za vjetrovitog vremena češći su slučajevi samozapaljenja.

Termogeneza uzrokuje značajnu štetu. Uzrokuje kvarenje sijena. Međutim, s umjerenim razvojem samozagrijavanja, termogeneza može biti poželjna. Na primjer, "samosušeća" slama, kao rezultat zagrijavanja, bolje jede stoka itd. Fenomen termogeneze koristi se za pripremu tzv. smeđeg sijena. Priprema se u krajevima gdje je zbog klimatskih uvjeta otežano sušenje sijena. Istodobno, za sušenje hrane ne koristi se sunčeva energija, već toplina koja se oslobađa kao rezultat vitalne aktivnosti mikroorganizama koji žive u biljnoj masi.

U sušenoj hrani mikroorganizmi su u anabiotičkom stanju. Kada se hrana navlaži, počinju se razmnožavati i uzrokovati kvarenje.

Teoretski, priprema sijena povezana je sa sušenjem usjeva s početnim sadržajem vode od 65-75% do sadržaja vode od 10-16%, pri čemu prestaje svaka biokemijska i mikrobiološka aktivnost. U praksi se sijeno ne suši do tako niskog udjela vode, a zapravo se smatra sigurnim skladištiti sijeno nakon što se prosječni udio vode smanji na 20%. To je dovoljno visoka vlažnost za pojavu plijesni, osim ako tijekom skladištenja ne dođe do daljnjeg gubitka vode.

U svim slučajevima, tijekom prva 2-3 dana skladištenja, opaža se prvi temperaturni vrhunac, nakon kojeg slijedi drugi, viši vrh.

To je drugi vrh koji je posljedica disanja gljivica koje se brzo razvijaju. Što je veći sadržaj vode na razini od 20%, to je veći rizik od plijesni, povećan gubitak suhe tvari. Dakle, ako se rastresite bale sijena skladište na sadržaj vode od 35-40%, gubitak suhe tvari će biti oko 15-20%, a topivih ugljikohidrata će biti potpun. Mikrobiološkom analizom otkrit će se veliki broj mikroorganizama među kojima su i opasne termofilne aktinomicete.

Znanost i praksa je utvrdila da se nutritivna vrijednost žitarica od žetve do sušenja, samo kao posljedica tekućih enzimskih procesa, može smanjiti za 20% i više. Značajniji gubici u hranjivoj vrijednosti žitarica nastaju kada se žanju po kišnom vremenu.

Sirovo i vlažno zrno počinje se samozagrijavati 2-3. dana, a potom klijati, pljesniviti i propadati. Dakle, pri dnevnoj temperaturi od 25 ° C, a noću 16 ° C, svježe zrno može sadržavati 800 pljesnivih gljiva, nakon 2 dana (u silosu) - 15 000, u zrnu koje se pridržava zidova tornja - 7 500 000.

Uvjetni ili, kako se ponekad naziva, kritični sadržaj vlage u zrnu pohranjenom za dugotrajno skladištenje smatra se 10-15%. Pri višoj vlažnosti zrno brzo propada. Jedan od glavnih razloga samozagrijavanja žitarica je razvoj plijesni i bakterija. Ako klijanje zrna počinje s apsorpcijom 40% vlage na njegovu masu, tada se razvoj bakterija događa na 16%, a razmnožavanje plijesni na 15% vlage.

Teškoća skladištenja stočne hrane i sirovina žitarica leži u činjenici da ih nije moguće očistiti od mikroorganizama i bakterija. Mikroorganizmi i bakterije široko su rasprostranjeni u prirodi i uvijek su prisutni u hrani za životinje i sirovinama. Nepovoljni uvjeti skladištenja hrane za životinje pospješuju razvoj i rast mikroorganizama, dok značajno pogoršavaju hranjiva svojstva, a ponekad ih čine potpuno neprikladnima za ishranu. Jedan od glavnih razloga loše kvalitete hrane i sirovina je njihovo oštećenje plijesni, od kojih mnoge proizvode sekundarne proizvode svoje vitalne aktivnosti - mikotoksine.

Izraz "vlažno zrno" općenito se odnosi na zrno s sadržajem vlage između 18 i 20%. Mokro zrno počinje se zagrijavati nekoliko sati nakon žetve, uglavnom zbog mikroorganizama. Ako su uvjeti skladištenja neprikladni i nekontrolirani, temperatura zrna će porasti do razine na kojoj se mogu uspješno razvijati vrlo opasne aktinomicete koje uzrokuju niz različitih bolesti kod životinja i ljudi. Ako zrno sadrži više od 18% vode, dolazi do sekundarnih promjena, koje uzrokuju kvasci iz rodova Candida i Hansenula. Ovi mikroorganizmi mogu rasti pri vrlo niskim razinama kisika, au tim uvjetima može doći do slabog alkoholnog vrenja. Ovakva fermentacija dovodi do smanjenja udjela saharoze i povećanja udjela reducirajućih šećera u zrnu, stvaranja raznih aroma i oštećenja glutena.

2.3. Mikrobiološki procesi koji se odvijaju tijekom sazrijevanja sjenaže Opće je prihvaćeno da je glavna zajednica mikroorganizama koji se otkrivaju tijekom sazrijevanja sjenaže predstavljena, kao iu silaži, s tri glavne fiziološke skupine (mliječna kiselina, bakterije truljenja i kvasci), ali u manji iznos. Maksimalan broj mikroorganizama u osušenom materijalu detektira se do 15 dana (u silosu - do 7). Sjenaža ima manje organskih kiselina, više šećera, a kiselost joj je obično niža nego kod silaže.

Biološka osnova za izradu sjenaže je ograničavanje rezidualnog disanja biljnih stanica i nepoželjnih mikroorganizama "fiziološkom suhoćom". Sila zadržavanja vode u sjenaži je približno 50 atm., a osmotski tlak kod većine bakterija je 50-52 atm., tj. pri sadržaju vlage u travi od 40-55%, voda je u obliku koji je većini nedostupan. bakterije. Zbog povećanog osmotskog tlaka u masi sjenaže, bakterije maslačne kiseline i njihove spore ne mogu koristiti vlagu iz krme za svoj razvoj i klijanje. Plijesni se mogu razvijati pri navedenoj vlažnosti, ali je njihovo postojanje otežano zbog nedostatka zraka (kisika).

Osmotolerantne vrste bakterija mliječne kiseline mogu napredovati u ovoj vlažnosti. U kulturama bakterija mliječne kiseline u sjenaži osmotska aktivnost, aktivnost razmnožavanja, akumulacije mliječne kiseline, kao i sposobnost fermentacije složenih ugljikohidrata (škroba i dr.) su veće nego u kulturama bakterija mliječne kiseline u silaži.

Stoga, kao i kod siliranja, moraju se stvoriti optimalni uvjeti za razvoj bakterija mliječne kiseline (kontinuirano zbijanje tijekom polaganja i hermetičko prekrivanje polietilenskom folijom radi ograničenja pristupa zraka). Ako skladište nije dovoljno zbijeno i nepropusno, to dovodi do zagrijavanja, kalupljenja hrane i drugih nepoželjnih aerobnih procesa.

U takvim uvjetima ne može se pripremiti kvalitetna sjenaža.

Kao rezultat procesa samozagrijavanja, probavljivost hranjivih tvari, osobito bjelančevina, oštro je smanjena. Tehnologija žetve sjenaže i silaže od nisko vlažnih trava detaljno je opisana u mnogim knjigama i priručnicima, ovdje ćemo samo naglasiti da je uz pridržavanje osnovnih tehnoloških postupaka hranjiva vrijednost sjenaže veća od hranjive vrijednosti pripremljene silaže. od prirodne krme ili krme s niskom vlagom. 1 kg prirodne hrane sadrži 0,30–0,35 krm. jedinice

2.4. Mikrobiološki procesi koji se odvijaju tijekom siliranja

O botaničkom sastavu zelene mase, sadržaju topivih ugljikohidrata i bjelančevina u njoj te o vlažnosti početne mase ovisi i kvantitativni i kvalitativni (vrstni) sastav zajednice mikroorganizama koji sudjeluju u sazrijevanju silaže. .

Tako se npr. sirovine bogate proteinima (djetelina, lucerna, slatka djetelina, esparzeta i dr.), za razliku od sirovina bogatih ugljikohidratima (kukuruz, proso i dr.), siliraju uz dugotrajno sudjelovanje u procesima truljenja i uz polagano povećanje broja bakterija mliječne kiseline.

Međutim, u svakom slučaju, nakon polaganja biljne mase u skladište, uočava se masovno razmnožavanje mikroorganizama. Njihov ukupan broj nakon 2-9 dana može znatno premašiti broj mikroorganizama koji ulaze s biljnom masom (Tablica 7).

–  –  –

Kod svih metoda siliranja u sazrijevanju silosa sudjeluje zajednica mikroorganizama koju prema prirodi utjecaja na biljni materijal čine dvije dijametralno suprotne skupine: štetne (nepoželjne) i korisne (poželjne) skupine. Priroda njihovog odnosa varira ne samo od simbiotskog do antagonističkog, što u konačnici određuje uspjeh ili neuspjeh u ishodu siliranja, već i o prirodi siliranog materijala, zraka i temperaturnih režima.

Tako se u procesu siliranja truležni mikroorganizmi zamjenjuju mliječno kiselim, koji zbog stvaranja mliječne i djelomično octene kiseline snižavaju pH krmiva na 4,0-4,2 i time stvaraju nepovoljne uvjete za razvoj truležnih mikroorganizama. mikroorganizama (vidi tablicu 7).

Uvjeti postojanja (potreba za kisikom, odnos prema temperaturi, aktivna kiselost itd.) nisu isti za različite skupine mikroorganizama.

S gledišta potrebe za kisikom, uvjetno se razlikuju tri skupine mikroorganizama:

Razmnožavanje samo u potpunoj odsutnosti kisika (obligatni anaerobi);

Razmnožavanje samo u prisutnosti kisika (obligatni aerobi);

Razmnožavaju se u prisutnosti kisika i bez njega (fakultativni anaerobi).

Većina mikroorganizama koji uzrokuju malfermentaciju ne može podnijeti pH ispod 4,0, pa je poželjno brzo postići ovu optimalnu razinu kiselosti.

Da bi se ograničilo djelovanje štetnih mikroorganizama i potaknulo razmnožavanje korisnih bakterija, potrebno je poznavati karakteristike pojedinih skupina mikroorganizama.

U tablici. Na slici 8. shematski su prikazane fiziološke i biokemijske karakteristike glavnih predstavnika mikroorganizama koji sudjeluju u procesima siliranja.

Tablica 8. Uvjeti za postojanje mikroorganizama u silosu

–  –  –

Za dobivanje visokokvalitetne silaže nije manje važno stvaranje anaerobnih uvjeta - čvrsto zbijanje i dobro brtvljenje.

U silaži dobivenoj u nehermetičkim (aerobnim) uvjetima broj bakterija mliječne kiseline nakon početnog povećanja brzo opada, u hermetičkim (anaerobnim) ostaje visok. 7. dan fermentacije u anaerobnim uvjetima uočava se visok postotak homofermentativnih bakterija, u aerobnim uvjetima - pediokoka.

Iako se kasnije u tom silosu pojavi dovoljna količina štapića mliječne kiseline, oni više ne mogu spriječiti rast nepoželjnih mikroorganizama.

Dakle, bakterije mliječne kiseline se razlikuju po sljedećim značajkama koje su važne za siliranje:

1) potreba za metabolizmom, uglavnom ugljikohidratima (šećer, rjeđe škrob);

2) protein se ne razgrađuje (neke vrste u zanemarivim količinama);

3) fakultativni su anaerobi, odnosno razvijaju se bez kisika i u prisutnosti kisika;

4) temperaturni optimum je najčešće 30 °C (mezofilne bakterije mliječne kiseline), ali u nekim oblicima doseže i 60 °C (termofilne bakterije mliječne kiseline);

5) podnosi kiselost do pH 3,0;

6) mogu se uzgajati u silaži s vrlo visokim sadržajem suhe tvari;

7) lako podnose visoke koncentracije NaCl i otporni su na neke druge kemikalije;

8) osim mliječne kiseline, koja igra odlučujuću ulogu u suzbijanju nepoželjnih vrsta vrenja, bakterije mliječne kiseline izlučuju biološki aktivne tvari (vitamine skupine B i dr.). Imaju preventivna (ili kurativna) svojstva, potiču rast i razvoj domaćih životinja.

U povoljnim uvjetima (dovoljan sadržaj vodotopivih ugljikohidrata u početnom biljnom materijalu, anaerobioza) mliječno-kisela fermentacija završava za nekoliko dana i pH postiže optimalnu vrijednost od 4,0-4,2.

2.4.1. kukuruzna silaža

Metode žetve i skladištenja kukuruzne silaže koje se danas koriste u proizvodnim uvjetima ne daju visokoenergetske krmive. Često čak ni hibridi ranog sazrijevanja nemaju vremena za postizanje optimalnih faza razvoja (mliječni vosak, voštana zrelost zrna) zbog klimatskih uvjeta, posebno u sjevernom dijelu Bjelorusije. Visoka vlažnost početne zelene mase i relativno visok sadržaj šećera dovode, kao što pokazuje praksa, do proizvodnje prezakiseljene hrane (pH 3,3-3,7) niske hranjive vrijednosti (0,12-0,14 krmne jedinice po 1 kg hrane) .

Osim toga, postoji zabrinutost zbog pogoršanja aerobne stabilnosti kvalitetne kukuruzne silaže (zrna).

U nekim slučajevima uočavaju se značajni gubici tijekom vađenja kukuruzne silaže iz skladišta i njenog hranjenja, unatoč strogom pridržavanju osnovnih tehnoloških postupaka tijekom polaganja (smanjenje vlage, pravovremeno polaganje, pouzdano zbijanje i sklonište). To se događa kao rezultat aktivnosti aerobne mikroflore koja kao izvor energije koristi uglavnom ugljikohidrate topive u vodi i mliječnu kiselinu. U praksi to prati toplinski proces, u konačnici "aerobna reprodukcija" silaže koju životinje odbacuju.

2.4.2. Mikroflora zelene mase kukuruza

Istraživanja mikroflore svježe zelene mase kukuruza i klipa tijekom žetve silaže pokazala su da se njeni predstavnici uključeni u procese sazrijevanja silažne krme nalaze u približno istom brojčanom omjeru kao iu ostalim vrstama svježih sirovina za silažu. Analizom kvantitativnog i kvalitativnog sastava mikroflore kukuruza utvrđen je dominantan broj bakterija truljenja - Bacillus megaterium, Bacterium levans, Pseudomonas herbicola levans (Tablica 9).

Otkriva se veliki broj kvasnica - Hansenula anomala, Candida krusei, Pichia membranae faciens, Saecharomyces exiguus, kao i plijesni Aspergillus fumigatus, Fusarium sporotriciella, Geotrichum candidum i dr.

Glavni predstavnici bakterija mliječne kiseline kukuruza bili su štapićasti oblici vrste Lactobacillus plantarum.

Tablica 9. Broj mikroorganizama u svježoj zelenoj masi kukuruza tijekom utovara u skladište, mln.

stanica/g mase silaže

–  –  –

Mikroflora svježe ubranih klipova znatno je siromašnija od mikroflore zelene mase uzete u isto vrijeme i na istom polju. To ukazuje da je omotač zaštitni omotač klipa u odnosu na mikrofloru. Dakle, 1 g omota sadrži jedinice i desetke milijuna bakterija truljenja, bakterije truljenja pronađene su u samom klipu u količini od desetak tisuća, a bakterije mliječne kiseline - stotine i tisuće stanica.

2.4.3. Mikroflora siliranog kukuruza

Kukuruz je bogat ugljikohidratima, stoga, kada se tijekom siliranja stvore anaerobni uvjeti, bakterije mliječne kiseline prilično brzo stječu brojčanu nadmoć nad truležnim. Ako je drugog dana u silaži kukuruza bilo 430 milijuna bakterija mliječne kiseline, bakterija truljenja - 425 milijuna po 1 g mase silaže, a zatim nakon 15 dana, kada se broj bakterija mliječne kiseline povećao na 900 milijuna, bakterije truljenja su izolirane u vrlo male količine. Bakterije maslačne kiseline ne razvijaju se u optimalnim uvjetima siliranja.

Promatranjem dinamike sazrijevanja kukuruzne silaže uočeno je da u prvoj fazi ne sudjeluju samo bakterije truljenja i bakterije mliječne kiseline, već i kvasci. Njihov broj značajno se povećava 2. dana.

Aktivnost kvasca u silaži smatra se nepoželjnom iz dva razloga.

Prvo, one se natječu s bakterijama mliječne kiseline za šećere, koje fermentiraju uglavnom u etilni alkohol, koji nema značajnu vrijednost konzervansa. Pri nastajanju etilnog alkohola iz glukoze prvo nastaje piruvat koji se zatim dekarboksilira u acetaldehid koji se reducira u etilni alkohol. Osim etilnog alkohola, kvasci u anaerobnim uvjetima stvaraju i druge proizvode (octenu, propionsku, maslačnu, izomaslačnu kiselinu, n-propanol, izobutanol, izopentanol). Osim heksoznih šećera, neki kvasci koriste pentoze (D-ksiloza, D-riboza), polisaharide (škrob), alkohole (manitol, sorbitol).

Drugo, kvasac je glavni uzročnik aerobne razgradnje silaže uz pomoć organskih kiselina (mliječne, octene, limunske).

Dakle, u kukuruzu bogatom ugljikohidratima, pri optimalnom načinu siliranja, u početnom razdoblju sazrijevanja, proces fermentacije je posljedica pretežnog sudjelovanja zajednice mikroorganizama ugljikohidratnog vrenja: truležnih, mliječnokiselih i kvasaca. Bakterije truljenja dominiraju ne više od prvih 2-5 dana, a zatim, pod utjecajem sve većeg broja bakterija mliječne kiseline, zaustavljaju svoj razvoj u uvjetima niskog pH.

Bakterije mliječne kiseline, nakon što su dosegle dominantan položaj, gotovo potpuno zamjenjuju bakterije truljenja. Zatim, kako pH razina dalje opada, njihov se broj smanjuje.

Aerobni uvjeti u silosu su nepovoljni za razvoj plijesni. Oni se, u pravilu, razvijaju samo u odvojenim područjima, na rubovima i na površinama koje dolaze u dodir sa zrakom.

Poremećajem tehnološkog režima siliranja kukuruzne mase najviše je pogođena aktivnost kvasaca i maslačnih bakterija, odnosno mikroorganizama koji razaraju ugljikohidrate. Takvu silažu karakterizira visok sadržaj octene, pa čak i maslačne kiseline. Prisutnost velike količine octene kiseline uvijek ukazuje na smanjenu kvalitetu silaže.

2.4.4. Mikroflora smrznutog kukuruza U uvjetima sjevernih regija Republike Bjelorusije postoje slučajevi siliranja smrznutog kukuruza. Uz pravilnu tehnologiju siliranja smrznutog kukuruza, nakon 3-5 dana, bakterije mliječne kiseline zauzimaju dominantan položaj, njihov broj je gotovo 10 puta veći od broja bakterija truljenja, a kvasac na ovom materijalu se otkriva čak iu većem broju nego u zreli silosi od kukuruza neoštećenog smrzavanjem.

Na ovom materijalu glavnu ekološku zajednicu mikroorganizama predstavljaju bakterije mliječne kiseline i truljenja te kvasci. Od bakterija truljenja izolirane su iste vrste koje se inače nalaze prilikom siliranja zelene mase raznih biljaka, pa tako i kukuruza - Pseudomonas herbicola i Bacterium levans.

Biokemijski podaci pokazuju da procese sazrijevanja ovih silosa karakterizira brzo i vrlo visoko nakupljanje organskih kiselina. Istodobno je uočeno da se tijekom skladištenja kiselost u ovim silosima značajno smanjuje. To se može objasniti potrošnjom kiselina od strane kvasaca, budući da se potonji ovdje nalaze čak iu silaži staroj 9 mjeseci, što dovodi do niže kvalitete gotove hrane.

Nakon 5 mjeseci skladištenja kvaliteta silaže uzeta u sredini skladišta iu dubljim slojevima bila je dobra u pogledu sastava organskih kiselina, mikroflore i organoleptičkih pokazatelja, dok je u gornjem dijelu dobivena silaža loše kvalitete. struktura. Silos iz gornjeg sloja skladišta imao je oštar miris po maslačnoj kiselini, au njemu su pronađene bakterije truljenja u dominantnoj količini u odnosu na mliječno-kisele: 30 odnosno 23 milijuna bakterija po 1 g silaže. Ovdje su bakterije maslačne kiseline pronađene u puno većem broju u usporedbi sa silosom koji leži u sredini strukture.

Dakle, mikrobiološki procesi sazrijevanja silaže kukuruza oštećenog mrazom odvijaju se intenzivnije nego kod siliranja kukuruza koji njime nije oštećen; uz veće učešće nepoželjne mikroflore u gornjim slojevima. Odgoda žetve smrznutog kukuruza je nedopustiva, jer pridonosi brzom razvoju nepoželjne mikroflore na smrznutim biljkama i značajno smanjuje kvalitetu gotove silaže.

Zbog toga se kukuruz oštećen mrazom mora brzo požnjeti i odmah silirati uz poštivanje svih tehnoloških postupaka.

2.4.5. Utjecaj kukuruzne silaže na izmjenu tvari u organizmu životinja Sa silažom se dnevno u organizam životinje unosi 0,7–0,9 kg organskih kiselina koje značajno utječu na procese probave i metabolizma. Ali ako se silaža zakiseli, tada se količina kiselina značajno povećava. Takva silaža negativno utječe ne samo na metaboličke procese, već i na okus i tehnološka svojstva mlijeka, kao i na njegove prerađevine (sirevi, maslac).

Dugotrajno hranjenje kukuruznom silažom spontane fermentacije u čistom obliku (bez drugih krmiva) inhibira procese fermentacije u buragu preživača, inhibira razvoj mikroflore i uzrokuje smanjenje probavljivosti hraniva u hrani, kao i prosječnih dnevnih prirasta. u živoj vagi. Životinje odbijaju hranu od kukuruza u kojem su se odvijali sekundarni procesi fermentacije.

Utvrđeno je smanjenje alkalne rezerve i šećera u krvi kod krava koje su obilno jele silažu spontane fermentacije.

Davanje 20-25 kg kukuruzne silaže koja je sadržavala maslačnu kiselinu kravama u laktaciji izazvalo je teški oblik acidoze i značajno povećalo kiselost mlijeka.

Silo tip hranidbe krava s nedostatkom lako probavljivih ugljikohidrata u hrani smanjuje amilolitičku aktivnost sadržaja buraga i himusa cekuma. Dugotrajno hranjenje krava od 25-30 kg peroksidne kukuruzne silaže spontane fermentacije negativno utječe na reproduktivnu sposobnost krava, biološku korisnost kolostruma i mlijeka, što dovodi do smanjenja rasta teladi i njihove otpornosti na gastrointestinalne bolesti. Znanstveni zaključci potvrđeni su u praktičnim uvjetima hranidbe krava kukuruznom silažom.

Treba napomenuti da se ketonemija u tijelu visokoproduktivnih krava razvija brže od niskoproduktivnih. Povreda omjera metabolita ugljikohidrata i masti u tijelu dovodi do pojave u krvi i tkivima značajne količine podoksidiranih metaboličkih proizvoda u obliku ketonskih (acetonskih) tijela i razvoja ketoze.

Fenomeni ketoze u tijelu obično su povezani s kršenjem metabolizma ugljikohidrata i masti s istodobnim smanjenjem količine šećera u krvi i naglim porastom ketonskih tijela. Glavni razlog ketoze je unos kiselih metaboličkih produkata u organizam tijekom razdoblja neuobičajenih uvjeta za apsorpciju prehrambenih hranjivih tvari, tj. trudnoće, laktacije, stresa itd. Otuda najveća sklonost ketozi kod ženki domaćih životinja koje konzumiraju povećanu količinu silaže.

Ketonemiju, bez obzira na uzrok koji ju je izazvao, karakterizira nakupljanje ketonskih tijela u krvi i tkivima pod utjecajem aktivirane octene i acetooctene kiseline. Acetooctena kiselina se pretvara u hidroksimaslačnu kiselinu pomoću enzima dehidrogenaze, a ova reakcija je reverzibilna. U buragu preživača pronađena je acetoacetat dekarboksilaza koja omogućuje tkivima buraga korištenje acetooctene kiseline uz oslobađanje acetona i ugljičnog dioksida. Ti se metaboliti eliminiraju iz tijela mokraćom i izdahnutim zrakom.

Ako se, primjerice, u zraku koji izdahnu preživači osjeti karakterističan miris acetona, onda je to pokazatelj ketoze.

Prekursori ketonskih tijela uključuju tirozin, leucin, izoleucin i fenilalanin, koji se sintetiziraju u buragu i unose hranom. U tijelu krave dnevno može nastati do 300 g ketonskih tijela. Glavni izvor ketoformacije u tijelu je maslačna kiselina. Njegovim uklanjanjem iz tijela zaustavlja se ketonemija. Mjesto formiranja ketonskih tijela smatra se tkivima ožiljka, jetre, a ponekad i mliječne žlijezde. Ketonska tijela iskorištavaju gotovo sva tkiva u tijelu.

Glavni uvjet za konačnu razgradnju ketonskih tijela na ugljični dioksid i vodu u tijelu je prisutnost dovoljne količine glukoze u tkivima i krvi. Maksimalna iskoristivost ketonskih tijela u tjelesnim tkivima moguća je pri koncentraciji u krvi od 20 mg%, prekoračenje ove granice dovodi do ketonemije. Izlučivanje ketonskih tijela iz organizma urinom, mlijekom i izdahnutim zrakom praćeno je oslobađanjem jednake količine iona natrija i kalija, što uzrokuje smanjenje alkalne rezerve krvi.

Za prevenciju ketonemije u preživača obično se preporučuju hormonski pripravci kao što su inzulin, ACTH, tiroksin, kao i glicerol, glukoza, propionska kiselina i njezine soli. Njihovo unošenje u organizam smatra se nužnim za povećanje propionske kiseline u buragu i smanjenje maslačne kiseline. Ovo je također olakšano uravnoteženjem prehrane za proteine ​​i ugljikohidrate, hranjenje životinja škrobnom i slatkom hranom.

Hranjenje krava silažom starterom propionske kiseline aktivira aktivnost celulolitičkih bakterija u probavnom traktu, čime se pospješuje razgradnja vlakana, potiče razvoj bakterija propionske kiseline u buragu, a hranjive tvari obroka se povećavaju. bolje apsorbira. Dakle, koeficijent probavljivosti glavnih sastojaka hrane s takvom silažom veći je nego kod prehrane sa silažom spontane fermentacije: za sirove bjelančevine - za 4%, sirove masti - za 8,4%, sirova vlakna - za 2,1% i ekstraktivnih tvari bez dušika - za 3%. Silaža s kiselim tijestom kod krava u laktaciji uzrokuje povećanje koncentracije šećera za 10-15%, rezervnu alkalnost - za 20-40 mg%, smanjuje koncentraciju ketonskih tijela za 5-7 mg% i time sprječava acidozu. Kod steonih suhoparnih krava aktivira se probava i poboljšava se fiziološko stanje. To dokazuje povećanje alkalne rezerve u krvi u prosjeku za 10 mg%, koncentracija šećera za 20 mg%, smanjenje razine ketonskih tijela u njemu za 4,6 mg% i rođenje zdrave, održive teladi. . Kod krava u laktaciji sadržaj masti u mlijeku se povećava za 0,20-0,25%, sadržaj proteina - za 0,20-0,30% i laktoze - za 0,10-0,20%.

Primjena ugljikovo amonijevih soli (UAS) u količini od 10 kg/t krmiva daje pozitivne rezultate u deoksidaciji kukuruzne silaže. Osim toga, silaža je istovremeno obogaćena proteinima.

2.4.6. Aerobna razgradnja kukuruzne silaže

Dobra i najkvalitetnija silaža ponekad se podvrgava brzom zagrijavanju kada se izvadi iz skladišta ili kada zrak uđe u skladište.

U kukuruznoj silaži, aerobni gubici su u nekim slučajevima dosegli 32% unutar 15 dana.

U silosima u kojima dolazi do aerobnog kvarenja zona povišene temperature najprije se proširila na površini silosa u skladištu (rame), a s vremenom se produbila za 20-40 cm, a zatim se površinski sloj (0-15 cm) ohladio, a njegov pH se povećao na 8,5–10,0 i započeo je razvoj gljivica plijesni. Tako u prvom stupnju kvarenja dolazi do zagrijavanja i porasta pH, a u drugom stupnju kvarenja dolazi do pljesnivanja. Posljedica ovih negativnih pojava je uništavanje mliječne kiseline, ugljikohidrata i drugih vrijednih tvari uz stvaranje mikotoksina opasnih po zdravlje životinja.

2.4.7. Uzroci aerobne probave hrane

Pod "sekundarnom" fermentacijom podrazumijeva se oksidacija organskih kiselina (uglavnom mliječne kiseline) nastalih tijekom siliranja, uz pristup zraka nakon završene fermentacije. Ovaj izraz, koji se posljednjih godina često koristi, nije posve točan u znanstvenom smislu. Ako je fermentacija proces anaerobne razgradnje ugljikohidrata, onda je "sekundarna" fermentacija suprotan proces enzimatske razgradnje uz pristup kisika.

Prodorom zraka dolazi do brze razgradnje ugljikohidrata, mliječne kiseline, a dalje do razgradnje bjelančevina uz porast pH. U praksi je to popraćeno toplinskim procesom, neugodnim mirisom, kršenjem strukture hrane (razmazano, uništeno). Čak i uz slabo samozagrijavanje do temperature od 40 ° C, životinje odbijaju takvu hranu.

Sporo punjenje, odgođeno brtvljenje su sve postupci koji povećavaju populaciju aerobnih mikroorganizama koji će se početi aktivno razvijati čim se silos otvori.

2.4.8. Mikroflora aerobne razgradnje hrane

Utvrđeno je da su primarni uzročnici sekundarne fermentacije kvasci koji imaju sposobnost asimilacije (razgradnje) mliječne kiseline.

Prisutnost kvasca u silaži prvi put je utvrđena 1932. godine, ali je njegova važnost bila podcijenjena sve do 1964. godine, kada je postalo jasno da kvasac ima glavnu ulogu u razgradnji silaže kada je izložen zraku. Nezainteresiranost za ove mikroorganizme objašnjena je činjenicom da je njihov broj u silaži zanemariv. Međutim, kukuruznu silažu često karakterizira visok broj ovih mikroorganizama, osobito kada je aerobna faza u silosu bila duga.

Glavni kvasci koji se nalaze u silaži dijele se u dvije skupine:

1) kvasac donjeg vrenja ili sedimentni kvasac, koji prvenstveno fermentira šećere (Torulopsis sp.);

2) kvasac gornjeg vrenja, ili membranski, koji ima slabu sposobnost fermentacije, ali učinkovito koristi mliječnu kiselinu kao supstrat (Candida sp., Hansnula sp.).

Istraživanje dinamike fermentacije pokazalo je da je udio kvasca u samozagrijavajućoj kukuruznoj silaži bio u početku 105-107 kvasca po 1 g neposredno nakon žetve, a zatim se postupno smanjivao. Većina sojeva kvasca izoliranih iz takvih silosa pripada Candida sp., Hansnula sp. Najčešći uzročnici nestabilnosti kao što su Candida krusei, Candida lamlica, Pichia strasburgensia, Hansenula anomala otporni su na vrlo niske razine pH.

Nakon 5 dana aerobnog skladištenja, nestabilna kukuruzna silaža ima astronomski visok broj ne samo kvasaca, već i drugih mikroorganizama (Tablica 10).

–  –  –

Posebno je upečatljiva prisutnost u silaži stanovnika neutralnih ili blago alkalnih tala - streptomiceta. Njihova prisutnost, kao i "prave" silažne plijesni, jedan je od razloga neprikladnosti za ishranu takve silaže. Ali u prisutnosti "pravih" plijesni i streptomiceta stranih silaži, ne govorimo o primarnim patogenima sekundarne fermentacije, već o sekundarnoj flori s aerobnom nestabilnošću.

Na kraju spontane fermentacije kukuruzne silaže količina kvasca je najmanje 104 stanica po 1 g krme (tablica 11).

Tablica 11. Kukuruzna silaža (konačna procjena nakon 173 dana)

–  –  –

Plijesni, kao i kvasci, imaju negativnu ulogu u razgradnji silosa kada im pristupi zrak, jer stvaraju otrovne tvari - mikotoksine. U ispitivanim uzorcima uzetim iz silosa prije hranjenja izolirane su i identificirane sljedeće plijesni: Aspergillus sp., Fusarium sp., Penicillium sp.

i dr. Životinje tretirane pljesnivom kukuruznom silažom koja je sadržavala A. fumigatus pokazale su upalu tankog crijeva, promjene u intermedijarnom tkivu pluća, gubitak apetita i proljev.

Kršenje srčane aktivnosti (puls je ubrzan, aritmičan) i disanje, probavne smetnje (atonija buraga ili povećana pokretljivost crijeva), depresija, odbijanje hrane uzrokovani su mikotoksinima Fusarium sporotrichiella, Geotrichum candidum. Ovi mikotoksini daju silaži užegli miris i uzrokuju gljivične infekcije domaćih životinja.

2.4.9. Načini povećanja aerobne stabilnosti silaže

Pravilno otvaranje silosa, mikrobiološka analiza zelene mase smještene u silos, uporaba kemijskih konzervansa s fungicidnim (fungistatičkim) svojstvima glavne su mjere ograničenja mikrobiološkog kvarenja tijekom dugotrajnog hranjenja ili aerobnog skladištenja kukuruzne silaže (mokrog zrna) .

Najočitiji i najučinkovitiji način za sprječavanje aerobne razgradnje je davanje silaže životinjama na dan vađenja iz silosa. Često uklanjanje hrane također povećava razgradnju na izloženoj površini silosa. Istovar treba izvesti bez pomicanja slojeva, razbijajući čvrstoću silosa koji ostaje u silosu.

Jedna od mogućih mjera poboljšanja aerobne stabilnosti kukuruzne silaže je tretiranje zelene mase kemikalijama koje suzbijaju aerobnu mikrofloru krmiva.

U tablici. 12 prikazani su najčešće korišteni konzervansi koji imaju fungistatičko (fungicidno) djelovanje na uzročnike sekundarne fermentacije.

–  –  –

Kalcijev format i octena kiselina nemaju praktični inhibicijski učinak na kvasce ako je primijenjena koncentracija ispod 0,5%. Unatoč brzoj razgradnji natrijevog nitrita, heksametilentetramina, preporučuju se za ograničavanje procesa sekundarne fermentacije, jer do početka fermentacije "oslobađaju" silažu od kvasaca. Najučinkovitiji fungistatički (fungicidni) konzervansi na procese sekundarne fermentacije su propionska i octena kiselina, natrijev benzoat, jer se oni u velikoj mjeri očuvaju prilikom vađenja silaže iz skladišta.

Usporedna studija fungistatskih (fungicidnih) svojstava propionske, mravlje, benzojeve kiseline, natrijevog benzoata, natrijevog nitrita, konzervansa-obogaćivača (koji uključuje propionsku kiselinu i ureu), finskih konzervansa (tip Viher) pokazala je da su natrijev nitrit i benzojeva kiselina imali najveća aktivnost kiseline, koja je inhibirala rast kvasca do 98%. Jačina djelovanja kemijskih konzervansa ovisila je o njihovoj dozi, koncentraciji vodikovih iona i broju stanica kvasca.

Primjena pripravaka stvorenih na bazi kombiniranih homofermentativnih i heterofermentativnih sojeva bakterija mliječne kiseline također pridonosi povećanju sigurnosti silaže tijekom vađenja iz silosa i hranidbe životinja. Iako uključivanje heterofermentacijskih bakterija dovodi do određenog povećanja gubitaka hranjivih tvari tijekom siliranja, ono pridonosi povećanju octene kiseline u hrani i, prema tome, povećanju njezine aerobne stabilnosti.

Dakle, tehnologija žetve kukuruzne silaže koja se koristi u proizvodnim uvjetima ne osigurava uvijek visoko hranjivu hranu. Silaža je zakiseljena, a životinja je malo konzumira. Otuda niska učinkovitost korištenja energetskih resursa. Obilno hranjenje životinja peroksidiranom silažom dovodi do poremećaja razine šećera, alkalne rezerve u krvi, razvoja ketoze itd.

U praksi su poznati slučajevi da se kvalitetna kukuruzna silaža vrlo brzo “zagrije” i vrlo brzo upljesnivi prilikom vađenja iz skladišta ili u samom skladištu kada ima zraka. Uzrok aerobne nestabilnosti je prisutnost gljivica (Candida sp., Hansenula sp.), koje mogu asimilirati mliječnu kiselinu.

Korištenje potonjeg dovodi do činjenice da se kiseli okoliš zamjenjuje alkalnim (pH 8,5–10,0), stvaraju se povoljni uvjeti za razvoj plijesni, maslačne, truležne mikroflore.

U slučaju kada 1 g početne silirane mase sadrži više od 4105 gljiva, iz nje je nemoguće dobiti aerobno stabilnu silažu te su potrebne dodatne mjere za ograničavanje gubitaka.

Za suzbijanje uzročnika sekundarne fermentacije postoje pripravci s fungicidnim (fungistatičkim) djelovanjem. Najbolje djelovanje protiv kvasca pokazala je benzojeva kiselina, natrijev nitrit, koji je gotovo u potpunosti (98%) inhibirao kvasac.

Za poboljšanje aerobne stabilnosti kukuruzne silaže predlažu se kompleksni biološki pripravci na bazi homo- i heterofermentativnih bakterija mliječne kiseline.

2.5. Utjecaj glavnih čimbenika okoliša na vitalnu aktivnost bakterija mliječne kiseline 2.5.1. Utjecaj kemijskog sastava izvorne zelene mase biljke na enzimatsku aktivnost bakterija mliječne kiseline Intenzitet stvaranja mliječne kiseline koju stvaraju bakterije mliječne kiseline ovisi o kvantitativnom odnosu mikroorganizama i kemijskom sastavu biljne mase.

U većini slučajeva prirodna prisutnost bakterija mliječne kiseline nije dovoljna da bi se postiglo brzo povećanje kiselosti silirane mase. Iznimka je kukuruz i druge sirovine bogate slobodnim šećerima. Značajka fermentacije tijekom silaže takve zelene mase je da već 2.-3. dana postoji brojčana prevlast bakterija mliječne kiseline, koje do 12. dana čine cjelokupnu masu bakterija koje postoje u silaži. To je zbog opskrbljenosti ovih kultura mono- i disaharidima, koji su najpogodniji za ishranu i postojanje bakterija mliječne kiseline. Podložno svim tehnološkim metodama, kao rezultat brzih biokemijskih transformacija tijekom početnog razdoblja skladištenja, kukuruzna silaža (kako u čistom obliku tako i uz dodatak slame) potpuno sazrijeva 15. dana od trenutka polaganja.

Mnogi monosaharidi (glukoza, levuloza, galaktoza, manoza) fermentiraju, u pravilu, sve bakterije mliječne kiseline.

Opća jednadžba mliječno-kiselog vrenja C6H12O6 = 2CH3CHOH · COOH glukoza mliječna kiselina je sumarna jednadžba koja sažima niz složenih transformacija ugljikohidrata i njihovih produkata raspada, koji se u mikrobnoj stanici odvijaju u fazama.

Određene vrste bakterija mliječne kiseline imaju sposobnost korištenja pentoza (ksiloza, arabinoza) i posebno ramnoze (metilpentoza).

Disaharidi (saharoza, maltoza, laktoza) obično se asimiliraju selektivno. Neke vrste bakterija mliječne kiseline fermentiraju neke ugljikohidrate, dok druge ne. U prirodi, međutim, postoje bakterije mliječne kiseline koje mogu apsorbirati i fermentirati prilično širok raspon disaharida.

Polisaharide (dekstrine, škrob, inulin) mogu fermentirati samo pojedini, nedavno opisani oblici bakterija mliječne kiseline. Biljna masa sadrži polisaharide levulesana, koji imaju ulogu rezervnih tvari. Relativno ih je lako hidrolizirati, a prema dostupnim preliminarnim podacima čini se da ih fermentiraju neke bakterije mliječne kiseline.

Vlakna ne koriste bakterije mliječne kiseline. Njegova zaliha u siliranoj masi ostaje nepromijenjena.

Sastav konačnih proizvoda vrenja jako se mijenja ako se ne fermentira heksoza, nego pentoza, odnosno šećer s pet atoma ugljika: nastaju produkti vrenja s dva i tri atoma ugljika (mliječna i octena kiselina).

U ovom slučaju, proces fermentacije može se izraziti sljedećom približnom jednadžbom:

6S5N10O5 = 8S3N6O3 + 3S2N4O2.

pentoza mliječna octena kiselina Biljne sirovine sadrže pentozane koji hidrolizom daju pentoze. Stoga ne čudi da se čak i uz normalno sazrijevanje silaže u njoj obično nakuplja određena količina octene kiseline.

Prema sastavu proizvoda fermentacije bakterije mliječne kiseline danas se dijele u dvije glavne skupine:

1) homofermentativni - formiranje od šećera, osim mliječne kiseline, samo u tragovima nusproizvoda;

2) heterofermentativni - stvaraju iz šećera, osim mliječne kiseline, značajne količine ugljičnog dioksida i drugih proizvoda.

Poznate biokemijske karakteristike navedenih skupina bakterija mliječne kiseline dane su u tablici. 13, što ukazuje na nakupljanje glavnih proizvoda njihove vitalne aktivnosti.

Tablica 13. Produkti fermentacije bakterija mliječne kiseline nastali iz ugljikohidrata

–  –  –

Kao što je vidljivo iz tablice, homofermentativne bakterije mliječne kiseline, za razliku od heterofermentativnih, stvaraju vrlo male količine hlapljive kiseline (octene kiseline), alkohola i ugljičnog dioksida.

Gubitak energije tijekom fermentacije glukoze homofermentativnim bakterijama mliječne kiseline je 2-3%, a prinos mliječne kiseline je 95-97%.

Na intenzitet stvaranja mliječne kiseline koju stvaraju bakterije mliječne kiseline značajno može utjecati ne samo sastav podloge (kemijski sastav biljne mase položene za silažu, sjenažu), već i drugi uvjeti (kiselost podloge, temperatura, prozračivanje itd.).

2.5.2. Utjecaj srednje kiselosti na brzinu nakupljanja kiseline

Pri različitim pH vrijednostima međureakcije koje se odvijaju tijekom fermentacije poprimaju drugačiji smjer. Ako se nastala mliječna kiselina neutralizira, tada će se razvojem homofermentativnih bakterija mliječne kiseline na heksozama nakupljati značajne količine octene kiseline i drugih nusproizvoda (do 40% fermentiranog šećera).

Rezultati brojnih istraživanja pokazali su smanjenje mliječne kiseline u silaži s povećanjem pH. Tako je u skupini uzoraka s pH iznad 5,0 uočen nizak udio mliječne kiseline, a njezin omjer s octenom kiselinom bio je 1:1.

Zbog činjenice da bakterije mliječne kiseline proizvode značajnu količinu kiseline kao rezultat svoje vitalne aktivnosti, one se razvijaju pri prilično niskoj pH vrijednosti.

Skupina bakterija mliječne kiseline uključuje i kokoidne i štapićaste oblike.

Šipkasti oblici podnose nižu kiselost.

Ovo svojstvo štapića mliječne kiseline objašnjava činjenicu njihovog nakupljanja do kraja siliranja, kada je hrana u velikoj mjeri zakiseljena.

Usporedba materijala različitih istraživača pokazuje da su za iste oblike bakterija mliječne kiseline naznačene neidentične vrijednosti kritične pH vrijednosti. To ne čudi, budući da na položaj kardinalnih pH točaka utječe sastav kiselina koje određuju reakciju medija, kao i komponente supstrata u kojem se bakterije razvijaju. Stoga, na primjer, minimalne pH točke za bilo koju bakteriju neće biti iste u dva različita okoliša. Dakle, manje disocirana, ali štetnija za mikroorganizme, octena kiselina zaustavlja razvoj bakterija mliječne kiseline pri višem pH od mliječne kiseline.

2.5.3. Utjecaj temperature na energiju stvaranja kiseline bakterija mliječne kiseline Životna aktivnost bakterija mliječne kiseline može se uspješno odvijati iu relativno hladnim iu samozagrijavajućim silosima.

Odvojene vrste i rase bakterija mliječne kiseline mogu se razviti pod sasvim različitim temperaturnim uvjetima. Njihovi najčešći predstavnici žive u rasponu od 7-10 do 10-42 ° C, s optimumom od oko 25-30 ° C.

Na sl. U tablici 1 prikazan je pokazatelj vitalne aktivnosti jedne od rasa bakterija mliječne kiseline, koja se često nalazi u siliranoj hrani, - energija stvaranja kiseline pri različitim temperaturama.

Riža. 1. Utjecaj temperature na energiju stvaranja kiseline bakterija mliječne kiseline U prirodi su, međutim, česti oblici bakterija mliječne kiseline koje se mogu razmnožavati iu zoni viših iu zoni nižih temperatura.

Na primjer, u silosima sazrelim zimi na vrlo niskoj pozitivnoj temperaturi, postoje streptokoki s minimalnom temperaturnom točkom ispod 5 °C. Optimum im je oko 25°C, a maksimum oko 47°C. Na temperaturi od 5 °C te bakterije još dosta snažno nakupljaju mliječnu kiselinu u hrani.

Pri niskim temperaturama mogu se razviti ne samo kokoidni, već i štapićasti oblici bakterija mliječne kiseline.

U samozagrijavajućim silosima bilo je moguće pronaći, uz bacile mliječne kiseline, i koke. Minimalna temperaturna točka koka koji se mogu razvijati na povišenim temperaturama je oko 12 °C, štapića - oko 27 °C. Temperaturni maksimum ovih oblika se približavao 55°C, dok je optimum u rasponu od 40-43°C.

Bakterije mliječne kiseline slabo se razvijaju u ekstremnim uvjetima - na temperaturama iznad 55 °C, a daljnjim porastom temperature umiru kao oblici koji ne stvaraju spore. Priroda utjecaja različitih temperatura na nakupljanje mliječne kiseline u silaži žitnih trava prikazana je na sl. 2.

Riža. Slika 2. Utjecaj temperature na akumulaciju kiseline u travnoj silaži Kao što se može vidjeti, na temperaturi od 60 °C, akumulacija mliječne kiseline je snažno potisnuta.

Neki istraživači primjećuju da se mliječna kiselina nakuplja u silosima kada se zagrijavaju i iznad temperature od 60-65 °C. S tim u vezi, treba imati na umu da ga mogu proizvesti ne samo bakterije mliječne kiseline.

Mliječnu kiselinu u određenoj mjeri proizvode i druge bakterije. Posebno se stvara u okolišu tijekom razvoja nekih štapića koji nose spore i pripadaju skupini You. subtilis i razmnožavanje na povišenim temperaturama.

Takvi oblici uvijek su bogato zastupljeni u samozagrijavajućim silosima.

2.5.4. Utjecaj prozračivanja na aktivnost bakterija mliječne kiseline

Bakterije mliječne kiseline su uvjetni fakultativni anaerobi, odnosno mogu živjeti i u prisutnosti kisika iu anaerobnim uvjetima. Stupanj opskrbljenosti okoliša kisikom može se karakterizirati vrijednošću redoks (OR) potencijala (Eh). Ponekad se OB potencijal izražava vrijednošću rH2, izračunatom formulom Eh (u milivoltima) rH2 = + 2pH.

Vrijednost rH2 pokazuje negativni logaritam koncentracije molekula vodika, izražen u atmosferama. Sasvim je očito da je stupanj opskrbljenosti kisikom u izravnoj vezi s koncentracijom molekula vodika u mediju, što ukazuje na stupanj njegove redukcije.

U kisikovoj sredini, s neutralnom reakcijom, vrijednost Eh je 810, a rN2 = 41. U atmosferi vodika, odnosno, Eh = –421, odnosno rN2 = 0. Fluktuacije navedenih vrijednosti karakteriziraju jednu ili drugu stupanj aerobnosti. U okruženju u kojem se razvijaju bakterije mliječne kiseline, potencijal se može smanjiti vrlo nisko, do vrijednosti rH2 od 5,0-6,0.

Dakle, bakterije mliječne kiseline ne trebaju kisik. Toliko su prilagođeni dobivanju potrebne energije uz pomoć procesa fermentacije da čak i uz pristup zraka ne prelaze na disanje i nastavljaju izazivati ​​proces fermentacije.

To je zbog nedostatka sustava enzima u bakterijama mliječne kiseline koji osiguravaju disanje (enzim hemin, katalaza i dr.).

Istina, postoje zasebne činjenice koje svjedoče o sposobnosti nekih uzročnika procesa mliječne kiseline da egzistiraju u aerobnim uvjetima zahvaljujući disanju.

Moguće je da se javljaju slični oblici bakterija, ali oni predstavljaju iznimku.

U literaturi postoje podaci o oksidaciji mliječne kiseline od strane pojedinih bakterija mliječne kiseline u aerobnim uvjetima. Zbog toga se u kulturama takvih mikroorganizama kiselost s vremenom smanjuje. Razmatranja ove vrste teško da su zdrava.

U gusto zbijenoj silažnoj hrani mogu se intenzivno razmnožavati bakterije mliječne kiseline, dok velika većina bakterija truljenja i plijesni doživljava jasnu depresiju.

Ako postoji pristup kisika do silirane mase, tada mliječnu kiselinu uništavaju kvasci, plijesni i druge aerobne bakterije.

U tom slučaju smanjuje se kiselost silaže, u njoj se počinju razvijati procesi truljenja i hrana se kvari (slika 3).

–  –  –

Na sl. Slika 3 pokazuje da su aerobni uvjeti pridonijeli razgradnji mliječne kiseline u silaži kelja. Ovo krmivo je pokvareno jer faktor konzervansa - mliječna kiselina više nije djelovao na nepoželjnu mikrofloru, koja je ostala u pasivnom stanju u masi krme.

2.5.5. Utjecaj povećanog osmotskog tlaka medija na razvoj bakterija mliječne kiseline Podaci o otpornosti bakterija mliječne kiseline na povećani osmotski tlak medija su ograničeni. Iz dostupnih podataka proizlazi da različite vrste ovih mikroorganizama imaju različite stavove prema prisutnosti natrijevog klorida u okolišu, uključujući ponekad prilagodbu na visoke koncentracije soli.

Detaljna istraživanja fiziologije bakterija mliječne kiseline, provedena pod vodstvom E. N. Mišustina, uvjerljivo su pokazala slabu prilagodljivost epifitskih bakterija mliječne kiseline fermentaciji u mediju s visokim osmotskim tlakom u biljnim stanicama. Novija istraživanja su otkrila da su kulture bakterija mliječne kiseline u sjenaži osmofilnije od kultura izoliranih iz silaže. Oni su izdržali koncentraciju natrijevog klorida od 7 do 10%, dok su bakterije mliječne kiseline u silaži - do 7%. Istodobno, već pri 6%-tnom udjelu soli u mediju, morfologija stanice se počinje mijenjati: oblik se izdužuje, uočava se bubrenje na krajevima stanice, zakrivljenost u središtu i duž periferije, a neke od njihovih vitalnih funkcije su povrijeđene. To je zbog dehidracije i teškoće u konzumiranju hranjivih tvari iz okoliša.

Približno u istim uvjetima mikroorganizmi padaju u proces žetve sjenaže. Kulture bakterija mliječne kiseline u sjenaži, prilagođene visokoj osmotskoj aktivnosti staničnog soka (50 atm. pri 40–45% vlage trave), imaju veću sposobnost preživljavanja od bakterija mliječne kiseline u silaži, truležnim mikroorganizmima, kvascima.

Dakle, osmotska aktivnost kultura bakterija mliječne kiseline u sjenaži je čimbenik koji osigurava njihovu dominantnu poziciju u pripremi i daljnjem skladištenju hrane s niskom vlagom. Ako je sadržaj vlage u konzerviranoj masi ispod 50-60%, tada će se dobro očuvati čak i uz nedostatak ugljikohidrata topivih u vodi.

Kulture bakterija mliječne kiseline u sjenaži i silaži razlikuju se ne samo po osmotskoj aktivnosti, već i po aktivnosti razmnožavanja i nakupljanja mliječne kiseline, kao i sposobnosti fermentacije škroba, arabinoze i ksiloze. Maksimalan broj mikroorganizama u varijantama sa osušenom masom otkriven je 15. dan, dok je u varijantama silaže od svježe pokošenih biljaka - 7. dan.

Međutim, u proizvodnim uvjetima nije lako postići visok sadržaj suhe tvari u pokošenoj travi zbog vremenskih uvjeta. Stoga su znanstvenici već niz godina u potrazi za biološkim pripravcima koji bi mogli pozitivno utjecati na kvalitetu konzervirane hrane od svježe pokošene i osušene trave. Kod siliranja osušenog bilja treba koristiti samo posebne osmotolerantne bakterije mliječne kiseline.

2.6. Bakterije maslačne kiseline

Bakterije maslačne kiseline (Clostridium sp.) su pokretne štapićaste anaerobne bakterije maslačne kiseline (klostridije) koje stvaraju spore i široko su rasprostranjene u tlu. Prisutnost klostridija u silaži posljedica je kontaminacije tla, jer je njihov broj na zelenoj masi krmnog bilja obično vrlo mali. Gotovo odmah nakon punjenja skladišta zelenom masom, maslačno-kisele bakterije počinju se intenzivno razmnožavati zajedno s bakterijama mliječne kiseline u prvim danima.

Visoka vlažnost biljaka, zbog prisutnosti biljnih staničnih sokova u usitnjenoj masi silaže, te anaerobni uvjeti u silosu idealni su uvjeti za rast klostridija. Stoga se do kraja prvog dana njihov broj povećava, a potom ovisi o intenzitetu mliječno-kiselog vrenja.

U slučaju slabog nakupljanja mliječne kiseline i sniženja pH razine, bakterije maslačne kiseline se snažno razmnožavaju i njihov broj doseže maksimum (103-107 stanica/g) za nekoliko dana.

Povećanjem vlažnosti zraka (sa sadržajem 15% suhe tvari u masi silaže) osjetljivost klostridija na kiselost medija opada već pri pH 4,0.

Teško je odrediti točnu kritičnu pH vrijednost silaže pri kojoj počinje inhibicija Clostridiuma, budući da ona ne ovisi samo o količini stvorene mliječne kiseline, već i o vodi u hrani i temperaturi okoline.

Klostridije su osjetljive na nedostatak vode. Dokazano je da se s povećanjem slobodne vode smanjuje osjetljivost ovih bakterija na kiselost medija.

Temperatura hrane ima značajan utjecaj na rast Clostridiuma. Optimalna temperatura za rast većine ovih bakterija je oko 37°C.

Spore klostridije karakterizira visoka toplinska stabilnost.

Stoga bakterije maslačne kiseline mogu dugo ostati u silaži u obliku spora, a kada dospiju u povoljne uvjete za njihov razvoj počinju se razmnožavati. To objašnjava odstupanje u biokemijskim i mikrobiološkim parametrima silaže: maslačne kiseline nema, a titar maslačnih bakterija u istim uzorcima krmiva je visok.

Proučavanje produkata maslačne fermentacije u silaži pokazalo je da postoje dvije fiziološke skupine: saharolitičke i proteolitičke klostridije.

Saharolitičke klostridije (Cl. butyricum, Cl. pasteurianum) fermentiraju uglavnom mono- i disaharide. Količina nastalih produkata je različita (maslačna, octena i mravlja kiselina, butilni, etilni, amilni i propilni alkoholi, aceton, vodik i ugljikov dioksid) i jako varira. To je zbog pripadnosti vrsti mikroorganizama, supstrata, razine pH, temperature. Omjer ugljičnog dioksida i vodika obično je 1:1. Pretpostavlja se da maslačna kiselina nastaje kondenzacijom dviju molekula octene kiseline. Izravno stvaranje maslačne kiseline ne može poslužiti kao izvor energije za klostridije. Za održavanje njihove vitalne aktivnosti potrebna je octena kiselina, koja nastaje tijekom oksidacije acetaldehida kao rezultat dekarboksilacije pirogrožđane ili mliječne kiseline.

Saharolitičke klostridije koje fermentiraju mliječnu kiselinu i šećer uključuju Cl. butiric, Cl. tyrobutyricum, Cl. papaputrificum. U silaži s dominacijom ovih klostridija mliječne kiseline i šećera obično gotovo nema. Uglavnom je prisutna maslačna kiselina, iako često može biti puno octene kiseline.

S6N12O6 = S4N8O2 + 2SO2 + 2N2.

šećer maslačni ugljikov dioksid kiseli plin 2S3N6O3 = S4N8O2 + 2SO2 + 2N2.

Mliječna maslačna vodikova kiselina kiseli plin Proteolitički klostridije fermentiraju uglavnom proteine, ali također i aminokiseline i amide. Kao rezultat katabolizma aminokiselina nastaju hlapljive masne kiseline, među kojima prevladava octena kiselina. Utvrđeno je značajno sudjelovanje proteolitičkih klostridija u razgradnji ugljikohidrata. Silosi sadrže proteolitičke klostridije vrste Cl. sporogenes, Cl. acetobutyricum, Cl. Subterminale, Cl. bifermentas. Količina maslačne kiseline u silaži pouzdan je pokazatelj opsega aktivnosti klostridija.

Maslačna fermentacija dovodi do velikih gubitaka hranjivih tvari kroz katabolizam proteina, ugljikohidrata i energije.

Energija se gubi 7-8 puta više nego mliječno-kiselim vrenjem. Osim toga, postoji pomak u reakciji silaže na neutralnu stranu zbog stvaranja alkalnih spojeva tijekom razgradnje proteina i mliječne kiseline. Organoleptička svojstva krmiva pogoršavaju se zbog nakupljanja maslačne kiseline, amonijaka i sumporovodika. Prilikom hranjenja krava takvom silažom, spore Clostridiuma s mlijekom ulaze u sir i, klijajući u njemu pod određenim uvjetima, mogu uzrokovati njegovo "bubrenje" i užeglost.

Dakle, uzročnike maslačne fermentacije karakteriziraju sljedeće glavne fiziološke i biokemijske značajke:

1) bakterije maslačne kiseline, kao obvezni anaerobi, počinju se razvijati u uvjetima jakog zbijanja silaže;

2) razlažući šećer, natječu se s bakterijama mliječne kiseline, a pomoću bjelančevina i mliječne kiseline dovode do stvaranja visoko alkalnih produkata razgradnje bjelančevina (amonijak) i toksičnih amina;

3) bakterije maslačne kiseline za svoj razvoj trebaju vlažne biljne materijale i s visokom vlagom početne mase imaju najveće šanse za suzbijanje svih ostalih vrsta vrenja;

4) optimalne temperature za bakterije maslačne kiseline kreću se od 35-40 °C, ali njihove spore podnose i više temperature;

5) bakterije maslačne kiseline osjetljive su na kiselost i prestaju s djelovanjem pri pH ispod 4,2.

Učinkovite mjere protiv patogena maslačne fermentacije su brzo zakiseljavanje biljne mase, sušenje mokrih biljaka. Postoje biološki pripravci na bazi bakterija mliječne kiseline za aktiviranje mliječno-kiselog vrenja u silaži. Osim toga, razvijene su kemikalije koje imaju baktericidni (supresivni) i bakteriostatski (inhibicijski) učinak na bakterije maslačne kiseline.

2.7. Bakterije truljenja (Bacillus, Pseudomona)

Predstavnici roda Bacilli (Bac. mesentericus, Bac. megatherium) po svojim fiziološkim i biokemijskim karakteristikama slični su predstavnicima klostridija, ali se za razliku od njih mogu razvijati u aerobnim uvjetima. Stoga su među prvima uključeni u proces fermentacije i najčešće se javljaju u količini od 104–106, ali u nekim slučajevima (na primjer, uz kršenje tehnologije) - do 108–109. Ovi mikroorganizmi su aktivni proizvođači raznih hidrolitičkih enzima. Kao hranjive tvari koriste razne bjelančevine, ugljikohidrate (glukozu, saharozu, maltozu i dr.) i organske kiseline.

Značajan dio proteinskog dušika (do 40% ili više) pod djelovanjem bacila može se pretvoriti u aminske i amonijačne oblike, a neke aminokiseline u mono- i diamine, posebno u uvjetima polaganog zakiseljavanja mase. Dekarboksilacija ima svoj maksimum u kiseloj sredini, dok se deaminacija odvija u neutralnoj i alkalnoj sredini. Dekarboksilacijom mogu nastati amini. Neki od njih imaju toksična svojstva (indol, skatol, metilmerkaptan i dr.), a pri hranjenju silažom te tvari dolaskom u krvotok uzrokuju razne bolesti i trovanja domaćih životinja. Neke vrste bacila fermentiraju glukozu, stvarajući 2,3-butilen glikol, octenu kiselinu, etilni alkohol, glicerol, ugljični dioksid i mravlju i jantarnu kiselinu u tragovima.

Važno svojstvo truležnih bakterija, koje je važno za procese koji se odvijaju u krmnoj masi, je njihova sposobnost sporulacije. U nekim raspadnutim silažama, posebice silosima za kukuruz, pronađene su bakterije srodne vrstama Bacillus. Oni su, očito, svojstveni silosu, a ne uvode se izvana (sa zrakom). Iz mnogih silosa nakon dugotrajnog skladištenja izdvajaju se bacili, iako ih u izvornoj travi gotovo nema.

Na temelju toga, sugerirano je da se neke bakterije truljenja mogu razviti iz spora u anaerobnim uvjetima.

Dakle, na temelju gore navedenog, glavne značajke za patogene truležne fermentacije su sljedeće:

1) bakterije truljenja ne mogu postojati bez kisika, stoga je truljenje nemoguće u zatvorenom skladištu;

2) razgrađuju prvenstveno bjelančevine (na amonijak i otrovne amine), te ugljikohidrate i mliječnu kiselinu (na plinovite produkte);

3) bakterije truljenja razmnožavaju se pri pH iznad 5,5. Uz sporo zakiseljavanje hrane, značajan dio proteinskog dušika prelazi u aminske i amonijačne oblike;

4) važno svojstvo truležnih bakterija je njihova sposobnost sporulacije. U slučaju dugotrajnog skladištenja i hranjenja silažom, u kojoj će kvasci i bakterije maslačne kiseline razgraditi veći dio mliječne kiseline ili će ona biti neutralizirana produktima razgradnje bjelančevina, bakterije truljenja, razvijajući se iz spora, mogu započeti svoje razorno djelovanje.

Glavni uvjet za ograničavanje postojanja bakterija truljenja je brzo punjenje, dobro zbijanje i pouzdano brtvljenje silosa. Gubici uzrokovani uzročnicima truležnog vrenja mogu se smanjiti uz pomoć kemijskih konzervansa i bioloških pripravaka.

2.8. Plijesni i kvasac

Obje ove vrste mikroorganizama pripadaju gljivicama i vrlo su nepoželjni predstavnici mikroflore silaže, lako podnose kiselu reakciju okoline (pH 3,2 i niže). Budući da su plijesni (Penicillium, Aspergillus i dr.) obligatni aerobi, počinju se razvijati odmah nakon punjenja skladišta, ali nestankom kisika njihov razvoj prestaje.

U pravilno napunjenom silosu s dovoljnim stupnjem zbijenosti i brtvljenja to se događa unutar nekoliko sati. Ako u silosu ima džepova plijesni, to znači da je istiskivanje zraka bilo nedovoljno ili da brtvljenje nije bilo potpuno. Opasnost od plijesni je posebno velika u osušenoj silaži biljnog materijala, jer se takva krma, posebno njeni gornji slojevi, vrlo teško zbijaju. U brušenim ogrlicama, pouzdano brtvljenje je praktički nedostižno. Gotovo 40% silaže postaje pljesniv; hrana ima razgrađenu strukturu koja se razmazuje i postaje neprikladna za hranjenje životinja.

Kvasci (Hansenula, Pichia, Candida, Saccharomyces, Torulopsis) razvijaju se odmah nakon punjenja skladišta, jer su fakultativni anaerobi i mogu se razviti uz male količine kisika u silaži. Osim toga, vrlo su otporni na temperaturne čimbenike i niske razine pH.

Gljivice kvasci zaustavljaju svoj razvoj tek u potpunom nedostatku kisika u silosu, ali se male količine nalaze u površinskim slojevima silosa.

U anaerobnim uvjetima koriste jednostavne šećere (glukozu, fruktozu, manozu, saharozu, galaktozu, rafinozu, maltozu, dekstrine) duž glikolitičkog puta i razvijaju se zbog oksidacije šećera i organskih kiselina:

C6H12O6 \u003d 2C2H5OH + 2CO2 + 0,12 MJ.

šećer alkohol ugljični dioksid Potpuna upotreba šećera i organskih kiselina dovodi do činjenice da se kiseli okoliš silaže zamjenjuje alkalnim, stvaraju se povoljni uvjeti za razvoj maslačne i truležne mikroflore.

Tijekom alkoholnog vrenja dolazi do velikih gubitaka energije.

Ako se tijekom mliječno-kiselog vrenja gubi 3% energije šećera, onda tijekom alkoholnog vrenja - više od polovice. U aerobnim uvjetima, oksidacija ugljikohidrata od strane kvasca dovodi do proizvodnje vode i CO2. Neki kvasci koriste pentoze (D-ksiloza, D-riboza), polisaharide (škrob).

Negativno djelovanje kvasaca u procesima sekundarne fermentacije je to što se razvijaju zbog oksidacije organskih kiselina, što se događa nakon završene fermentacije uz pristup zraka. Kao rezultat oksidacije mliječne i drugih organskih kiselina, kisela reakcija medija zamjenjuje se alkalnom - do pH 10,0.

Zbog toga se smanjuje kvaliteta silaže od kukuruza, kao i od “duboko” osušenog bilja, odnosno hrane s najboljim pokazateljima za produkte fermentacije.

Na temelju navedenog, plijesni i kvasci mogu se okarakterizirati na sljedeći način:

1) plijesni i kvasci su nepoželjni predstavnici aerobne mikroflore;

2) negativan učinak plijesni i kvasaca je taj što uzrokuju oksidativnu razgradnju ugljikohidrata, bjelančevina i organskih kiselina (uključujući mliječnu);

3) plijesni i kvasci lako podnose kiselu reakciju okoline (pH ispod 3,0 pa čak i 1,2);

4) plijesni izlučuju toksine opasne po zdravlje životinja i ljudi;

5) kvasci, kao uzročnici sekundarnih procesa fermentacije, dovode do aerobne nestabilnosti silosa.

Ograničenje pristupa zraka brzim polaganjem, nabijanjem i brtvljenjem, pravilnim iskopavanjem i hranjenjem odlučujući su čimbenici koji ograničavaju razvoj plijesni i kvasaca. Za suzbijanje razvoja uzročnika sekundarne fermentacije preporučuju se pripravci s fungistatskim (fungicidnim) djelovanjem.

Sumirajući navedeno, mikroorganizme u silaži možemo podijeliti na korisne (bakterije mliječne kiseline) i štetne (maslačne bakterije, bakterije truljenja, kvasci i plijesni).

Na temelju fizioloških i biokemijskih karakteristika mikroorganizama koji se nalaze u silaži, brzo smanjenje pH (na 4,0 ili manje) inhibira reprodukciju mnogih nepoželjnih mikroorganizama.

U ovom pH rasponu, uz bakterije mliječne kiseline, mogu postojati samo plijesni i kvasci. Ali oni zahtijevaju kisik. Stoga je za uspješno siliranje potrebno što brže uklanjanje zraka iz skladišta zbog pouzdanog zbijanja i brzog punjenja skladišta, odgovarajućeg zaklona. Time se stvaraju povoljni uvjeti za bakterije mliječne kiseline (anaerobi).

U idealnom slučaju, naime, uz dovoljan sadržaj u vodi topivih ugljikohidrata u početnom biljnom materijalu i anaerobnim uvjetima, mliječno-kiselo vrenje zauzima dominantan položaj. U samo nekoliko dana pH postiže svoju optimalnu razinu, pri čemu prestaju neželjene vrste fermentacije.

Kod siliranja krmnog bilja bogatog bjelančevinama potrebno ga je sušiti ili koristiti kemijske i biološke konzervanse koji suzbijaju (inhibiraju) razvoj nepoželjnih mikroorganizama i omogućuju dobivanje kvalitetne krme bez obzira na silažu i vlažnost izvorne biljke. biljni materijal.

Sirovine krmiva i stočna hrana tijekom skladištenja povoljan su hranjivi medij za brzi rast plijesni. Zbog kolebanja temperature danju i noću dolazi do migracije vlage u skladištu, što pridonosi ubrzanom rastu plijesni i razmnožavanju insekata.

Stočnu hranu zahvaćenu plijesni i insektima slabo jedu domaće životinje i ptice, uzrokuju depresiju krvožilnog i imunološkog sustava te ometaju rad bubrega. U konačnici se pogoršava zdravstveno stanje i produktivnost životinja i peradi, povećavaju se troškovi njihova održavanja i liječenja, a ekonomska učinkovitost stočarstva opada. Poznato je da životinje pljesnivo sijeno jedu izuzetno nerado ili ga uopće ne jedu. Plijesniva silaža i sjenaža također nisu prikladne kao hrana za životinje. Otrovni toksini koje izlučuju neke gljivične kulture nalaze se u silaži iz zemljanih gomila i zemljanih silosa ili u gornjim slojevima krmne mase velikih silažnih rovova s ​​lošim zbijanjem i nepropusnim zaklonom svježe pokošene, a posebno osušene mase.

Gljive koriste mnogo hranjivih tvari za vlastiti rast. Sadržaj hranjivih tvari u hrani kao rezultat života kolonije od 40 000 gljiva smanjuje se za 1,5–1,8% u jednom tjednu; dolazi do pogoršanja okusa, jer infekcija zrna s nekim vrstama gljivica dovodi do pojave karakterističnog odbojnog mirisa plijesni i neugodnog okusa.

Mijenjaju se fizikalna svojstva sirovina stočne hrane, što se očituje stvaranjem gustih grudica, što otežava njihov transport i dovodi do kiselosti zrna u silosima; u prisutnosti mikotoksina, što dovodi do lošeg zdravlja, usporavanja rasta životinja i smanjenja njihove produktivnosti.

Različite plijesni proizvode različite mikotoksine, a neke od njih proizvode više mikotoksina: Penicillium - ohratoksine; Fusarium - T-2 toksin, zearalenon, DON; Aspergillus - aflatoksini, ohratoksini. U tom je slučaju njihov negativni učinak znatno pojačan.

Mikotoksini se ne uništavaju tijekom toplinske obrade hrane i, ulazeći u tijelo životinja s hranom, nakupljaju se u mesu, jajima i mlijeku. Stoga je njihova prisutnost u stočnoj hrani velika opasnost ne samo za životinje, već i za zdravlje ljudi, budući da su neki od mikotoksina, posebice aflatoksini, kancerogeni i njihovo uzimanje u organizam treba apsolutno isključiti.

Za rast plijesni potrebni su brojni uvjeti:

1) temperatura. Optimalna temperatura za razvoj plijesni je u rasponu od 18-30 °C. Ipak, neke njihove vrste intenzivno rastu i razmnožavaju se na temperaturi od 4–8 °C;

2) vlažnost.

Kako bi smanjili sadržaj vlage u zrnu, proizvođači su prisiljeni sušiti ga do navedenih vrijednosti. To je povezano s velikim utroškom energije i radnih resursa za vrlo ograničeno vremensko razdoblje. Međutim, čak i pri skladištenju zrna sa standardnom vlagom, takav čimbenik kao što je migracija vlage ima negativan utjecaj na kvalitetu zrna tijekom skladištenja.

Dakle, kod skladištenja žitarica, čija početna vlažnost iznosi oko 13%, dolazi do migracije vlage zbog temperaturne razlike na vrhu (35 °C) i na dnu (25 °C) skladišta. Mjesec dana kasnije, sadržaj vlage u zrnu na dnu bio je 11,8%, a na vrhu - 15,5%. U procesu skladištenja žitarica normalne vlažnosti, u nekim područjima često se stvaraju optimalni uvjeti za brzi rast plijesni.

Postoje jaki medicinski dokazi o plućnim bolestima kod životinja i radnika koji rukuju pljesnivim sijenom i žitaricama. I kod ljudi i kod životinja nastaju udisanjem termofilnih mikroorganizama (Micropolispora, Thermo-actinomyces, Aspergillus).

Prema Svjetskoj zdravstvenoj organizaciji, oko 25% svjetskih zaliha žitarica kontaminirano je mikotoksinima, stoga je važno pozabaviti se njihovim izvorom – plijesni.

Postoje mnoge druge potencijalno opasne plijesni koje mogu uzrokovati niz mikotoksikoza, uključujući smanjenu plodnost, pobačaj i opće loše zdravlje. Sve ove bolesti uzrokuju mikotoksini koje proizvode gljivice: Aspergillus, Fusarium, Penicillium (aflatoksini, ceralenon, ohratoksin).

Glavni razlog pada kvalitete krmne smjese je njihovo oštećenje plijesni i posljedično onečišćenje mikotoksinima.

Gljive ulaze u krmnu smjesu uglavnom sa žitaricama i proizvodima njihove prerade, dijelom se dodatno inokuliraju tijekom procesa proizvodnje, transporta i skladištenja. Kao mrtvi supstrat, vrlo pristupačan mikroorganizmima, krmna smjesa je vjerojatnija da će biti napadnuta gljivicama nego žitarice. Tome pridonosi njegova visoka higroskopnost, kao i bogata opskrba hranjivim tvarima, osobito u vezi s obogaćivanjem vitaminima, elementima u tragovima i drugim dodacima.

Uslijed rasta i razmnožavanja plijesni u hrani dolazi do:

Smanjena energija i njezina hranjiva vrijednost, budući da za svoj život gljive koriste hranjive tvari hrane koju su zahvatile;

Pogoršanje okusa, jer čak i mala količina plijesni u hrani stvara prašinu, neugodan miris i okus, što uzrokuje lošu okusnost hrane za životinje;

Promjene fizikalnih parametara krmne smjese, koje se očituju u otpuštanju dodatne količine vode gljivama i zgrušavanju krmne smjese kao rezultat rasta micelija gljiva;

Kontaminacija hrane za životinje mikotoksinima koje proizvode gljive, što dovodi do zastoja u rastu životinja, smanjenja njihove proizvodnosti, konverzije hrane i uzrokuje trajno trovanje cjelokupnog stočnog fonda.

Krmna smjesa, koja se sastoji od zdrobljenog zrna, mekinje, plodno je tlo za klijanje plijesni. Što je duži rok trajanja sirovina, gotove stočne hrane, to je veći rizik od oštećenja plijesni. U povoljnim uvjetima može doći do značajnijeg razmnožavanja gljivica u vrlo kratkom vremenu, micelij gljiva naraste za 1 mm u 1 sat, pa je potrebno provoditi preventivno tretiranje antimikoticima, što je ekonomski opravdanije od borbe protiv gljivica i mikotoksina. u već pljesnivoj hrani.

Najpraktičniji i najpouzdaniji način zaštite stočne hrane od plijesni je uporaba pripravaka na bazi organskih kiselina i njihovih soli. Oni inhibiraju rast mikroorganizama zakiseljavanjem citoplazme stanice, što dovodi do smrti stanice. Općepriznati inhibitor plijesni je propionska kiselina. Međutim, uporaba propionske kiseline u čistom obliku povezana je s nizom poteškoća: kiselina snažno nagriza metalne dijelove strojeva i mehanizama, ima oštar oštar miris, hlapljivost i može dovesti do ozbiljnih opeklina osoblja koje radi s njom i korozije metalnih dijelova transportera i miješalica. U tekućem inhibitoru plijesni Mycokorm, propionska kiselina je sadržana u puferskom kompleksu koji je posebno razvio Franklin (Nizozemska), što omogućuje upotrebu lijeka bez oštećenja opreme i osoblja. Propionska i fosforna kiselina, koje su dio tekuće mikohrane, imaju određenu razinu aktivnosti u odnosu na plijesni, kvasce i bakterije. Svaka od navedenih kiselina ima svoje prednosti i nedostatke u pogledu spektra mikroorganizama koje treba inhibirati, jednostavnosti rukovanja i cijene. Korištene zajedno u optimalnim omjerima, ove organske kiseline zadržavaju svoje prednosti i kompenziraju pojedinačne nedostatke.

3. OPSEG GUBITAKA U KONZERVIRANOJ HRANI,

UZROKOVANA AKTIVNOŠĆU MIKROORGANIZAMA

Pri sastavljanju bilance krmiva potrebno je uzeti u obzir gubitke tijekom pripreme i skladištenja konzervirane hrane. Postoje mnoge sheme koje pokazuju da se ukupni gubici sastoje od gubitaka u polju, skladištima i da se javljaju čak i tijekom berbe zelene mase.

U ovom predavanju govori se o veličini gubitaka izazvanih djelovanjem mikroorganizama, koji se često podcjenjuju, a nestručnim radom mogu doseći goleme razmjere.

3.1. gubitak fermentacije

Nakon odumiranja biljnih stanica u ispunjenom i dobro zbijenom skladištu počinje intenzivna razgradnja i pretvorba hranjivih tvari razmnožavanjem mikroorganizama. Postoje gubici kao posljedica stvaranja fermentacijskih plinova ("otpada"), gubici u gornjim i bočnim slojevima, gubici zbog sekundarnih procesa vrenja.

Kontinuiranim punjenjem skladišnih prostora (silosa, sjenaže) može se značajno smanjiti stvaranje plinova. Uz brzo punjenje skladišta gubitak suhe tvari zbog "otpada" može iznositi 5-9%. Uz produženo punjenje, odgovarajući pokazatelji mogu doseći 10–13% ili više. Dakle, kontinuiranim punjenjem moguće je smanjiti gubitke od "otpada" za oko 4-5%.

Treba imati na umu da je u slabo zbijenoj sjenaži, kao rezultat procesa samozagrijavanja, probavljivost bjelančevina smanjena za faktor dva.

U nepokrivenoj silažnoj (sjenažnoj) masi dolazi do intenzivne razgradnje hranjivih tvari u gornjim i bočnim slojevima. Sa zaklonom s jednom pljevom ili bez zaklona gubici mogu biti puno veći. Plijesni, razvijajući se, postavljaju temelje za snažnu razgradnju proteina. Produkti razgradnje bjelančevina su alkalni i vežu mliječnu kiselinu. Postoji i izravna razgradnja mliječne kiseline. Ovi procesi dovode do povećanja pH razine i pogoršanja kvalitete hrane. Čak i ako oštećeni sloj ne prelazi 10 cm u trenutku otvaranja skladišta, treba imati na umu da je taj sloj izvorno bio debeo 20-50 cm, a silaža ispod oštećenog sloja karakterizirana je visokom razinom pH, sadrži toksične toksine i nije pogodan za ishranu životinja.

Gubici uzrokovani sekundarnim procesima fermentacije mogu doseći 20-25%. Utvrđeno je da prvi stupanj kvarenja silaže uzrokuje kvasac zajedno s aerobnim bakterijama, povezan je s njegovim zagrijavanjem, smanjenjem kiselosti. U drugoj fazi kvarenja silaže dolazi do naknadne infestacije plijesni. Takva se hrana smatra neprikladnom ako sadrži više od 5 x 105 gljiva. Već nakon 5 dana aerobnog skladištenja, u slučaju produljenog hranjenja ili nepravilnog vađenja iz skladišta, kukuruzna silaža čak i s dobrim početnim pH od 4,1, ali već s 3 x 107 kvasca, karakterizira astronomski visok broj kvasaca i plijesni Streptomycetcn. .

3.2. Hranite mikotoksikoze

Među brojnim čimbenicima okoliša sve veću pozornost u posljednje vrijeme privlače otrovne tvari - mikotoksini koje stvaraju mikroskopske gljive.

Mikotoksini su otrovni produkti metabolizma (metabolizma) plijesni koji se stvaraju na površini hrane i hrane za životinje. Toksigene gljive izuzetno su raširene u prirodi, a pod povoljnim uvjetima (povišena vlaga i temperatura) mogu zaraziti različite namirnice, stočnu hranu, industrijske tvari i uzrokovati značajne štete nacionalnom gospodarstvu. Konzumacija hrane i hrane za životinje kontaminirane (kontaminirane mikroorganizmima) ovim gljivama i mikotoksinima može biti praćena teškim oboljenjima ljudi i domaćih životinja - mikotoksikozama.

Posljednjih godina problem mikotoksikoza poprimio je velike razmjere. U Republici Bjelorusiji, kao iu cijelom svijetu, značajan dio proizvedenog zrna je kontaminiran mikotoksinima, koji ne samo da imaju negativan i destruktivan učinak na životinjski organizam, značajno smanjujući parametre produktivnosti, već i kvalitetu dobivenih proizvoda. , povećavajući ekonomske troškove, ali i predstavljaju ozbiljnu opasnost za ljudsko zdravlje.

Konzumacija kontaminirane hrane kod peradi dovodi do pojave kroničnih mikotoksikoza, karakteriziranih širokim spektrom oštećenja jetre, bubrega, probavnog trakta, dišnih organa, živčanog sustava, što u konačnici negativno utječe na produktivnost i sigurnost stoke. Široka rasprostranjenost ove negativnosti zahtijeva pronalaženje novih načina za rješavanje ovog problema.

Mikotoksikoza je bolest koja se javlja kada životinje jedu biljnu hranu zaraženu gljivicama koje stvaraju toksine. Mikotoksikoze nisu zarazne bolesti, kada se pojave u tijelu životinja ne dolazi do imunološkog restrukturiranja i ne razvija se imunitet. Mikotoksikozama mogu biti izložene sve vrste životinja, ptica i riba, a obolijevaju i ljudi.

Ukupan broj gljivičnih vrsta u svjetskoj mikroflori kreće se od 200 do 300 tisuća vrsta, toksigenih - od 100 do 150 vrsta. Najveću opasnost za životinje i ljude predstavlja hrana za životinje i hrana kontaminirana metabolitima gljiva, koji pripadaju dvije skupine.

Prva skupina su takozvane soprofite (skladišne ​​gljive) iz rodova Aspergillus i Penicillium. Uglavnom se radi o gljivama koje nisu u stanju zaraziti vegetativne biljke i dospijevaju u žitarice, krmiva i hranu uglavnom tijekom njihove žetve, skladištenja i pripreme za ishranu.

Uočena je određena supstratna specifičnost mikomiceta koje stvaraju toksične tvari: vrste roda Fusarium uglavnom inficiraju žitarice; Aspergillus - leguminoze i sastojci stočne hrane; Stachibotrys altemans, Dendrodochium toxicum utječu na grubu hranu.

Za razvoj gljivica koje proizvode mikotoksine potrebni su određeni uvjeti. Ergot i plamenjače zaraze biljke u vegetativnom stadiju. Sklerocij se razvija u tlu pri temperaturi 22–26 °C i vlažnosti 25–30 %. Temperatura i vlaga najvažniji su čimbenici koji potiču rast i razmnožavanje otrovnih gljiva. Optimalna vlažnost zraka je 25–30%, najpovoljnija temperatura 25–50 °C. Gruba krma (sijeno sa sadržajem vlage od 16%, slama - 15% tijekom skladištenja) nije pod utjecajem gljivica.

Kabasta hrana visoke vlažnosti se samozagrijava (tome pridonose mikroorganizmi) i stvaraju povoljne uvjete za razvoj mikomiceta.

Samozagrijavanje nije samo gruba krma, već i žito, kao i proizvodi njegove prerade (brašno, krmna smjesa, mekinje, otpaci žitarica itd.).

Vrlo važna točka je izolacija i proučavanje mikotoksina. Prema mnogim znanstvenicima izolirano je i imenovano od 80 do 2000 različitih mikotoksina, od kojih je 47 visokotoksičnih, a 15 ima kancerogena i mutagena svojstva (aflatoksini B i M, ohratoksin A, zearalenon, T-2 toksin, patulin, ciklopiazon i penicilne kiseline).i neki drugi). Prirodno otpušteni uključuju aflatoksine, ohratoksin A, patulin, T-2 toksin, penicilnu kiselinu itd.

Velika većina mikotoksina su egzotoksini, tj.

otpuštaju u podlogu na kojoj gljiva raste. Mikotoksini mogu ostati u hrani dugo vremena nakon smrti gljivice koja ih je stvorila. Stoga izgled hrane ne može uvijek poslužiti kao kriterij njezine sigurnosti. Mikotoksini su spojevi niske molekulske mase. Otporni su na visoke temperature, ne uništavaju se obradom vrućom parom, sušenjem, dugotrajnim skladištenjem, djelovanjem kiselina i lužina. Makroorganizam ne stvara protutijela protiv njih, tj. životinje i ljudi ostaju osjetljivi na mikotoksine tijekom cijelog života.

Najčešće mikotoksikoze kod životinja su aspergilotoksikoza, stahibotriotoksikoza, fusariotoksikoza, dendrodohiotoksikoza, mirotecitoksikoza, klavicenstokoksikoza, penicilotoksikoza, rizopuzotoksikoza, toksikoza uzrokovana gljivicama plamenjača.

Utvrđuju se njihove kemijske formule, fizikalna i kemijska svojstva, mehanizam djelovanja; neke su zemlje izračunale minimalne dopuštene koncentracije ovih mikotoksina u hrani za različite vrste domaćih životinja i peradi; kao i razvijene kvantitativne laboratorijske metode za određivanje tih tvari u različitim tvarima. Proučavaju se i drugi, manje proučavani mikotoksini, poput ergotoksina i dr., koji također uzrokuju značajne štete u stočarstvu i peradarstvu.

Opće je poznata činjenica da mikotoksini uneseni u kemijski čistom obliku pokazuju toksična svojstva u puno manjoj mjeri nego ista količina mikotoksina, ali proizvedena u prirodnim uvjetima. To je zbog činjenice da mikroskopske gljive u procesu života proizvode različite toksine, čiji broj može doseći nekoliko desetaka, a ti toksini pokazuju kombinirani toksični učinak.

Laboratoriji mogu otkriti samo mali dio poznatih mikotoksina. Sinergistički učinak mikotoksina je malo proučavan, iako je u praksi od velike važnosti.

Poteškoća leži u jedinstvenosti i nepredvidivosti kvalitativnog i kvantitativnog sastava mikotoksina koje sintetiziraju različite vrste gljiva u različitim uvjetima.

Poznata su i kumulativna svojstva mikotoksina. U slučaju prisutnosti mikotoksina u hrani za životinje u količinama ispod razine osjetljivosti metode određivanja, stvara se privid njihove odsutnosti, a time i sigurnosti hrane za životinje. Međutim, unutar nekoliko dana od hranjenja takvom hranom, kao rezultat kumulacije, doza nastalih toksina doseže kritičnu razinu i manifestira se na neki način, uglavnom smanjenjem apetita, općom depresijom, probavnim smetnjama itd. U U velikoj većini slučajeva, uzrok ovih simptoma će se tražiti u bilo čemu, samo ne u djelovanju mikotoksina.

Još jedan mogući razvoj događaja koji može ostati nezapažen dugo vremena je taj da će mikotoksini, kako se akumuliraju, postupno uništiti imunološki sustav životinje ili ptice. Takvo djelovanje tipično je za gotovo sve mikotoksine, ali je njegovo otkrivanje bez primjene posebnih metoda gotovo nemoguće. Slična je slika kada se u stočnoj hrani nalaze toksini u maksimalno dopuštenim koncentracijama. Ovi rezultati ukazuju na stvarnu mogućnost postojanja mnogih drugih mikotoksina u hrani za životinje koje laboratorijski testovi ne mogu otkriti.

Mikotoksini imaju jedno zajedničko svojstvo – oni su biocidi koji uništavaju žive stanice. Što se tiče ostalih svojstava, uključujući fizikalno-kemijska svojstva, mikotoksini se vrlo značajno razlikuju, što onemogućuje razvoj jedinstvene učinkovite metode za njihovu borbu.

Danas je najčešća metoda adsorpcija mikotoksina adsorbentima organskog ili anorganskog podrijetla. Metoda se temelji na fizikalnim svojstvima molekula mikotoksina - njihovoj polarnosti i veličini molekula. Stoga adsorbenti različite prirode adsorbiraju mikotoksine na različite načine.

Metoda adsorpcije učinkovito uklanja polarne mikotoksine (to su uglavnom aflatoksini, donekle fumonizini).

U isto vrijeme, neki adsorbenti praktički ne apsorbiraju nepolarne toksine, dok se drugi apsorbiraju nedovoljno učinkovito.

Stupanj neutralizacije mikotoksina ovisi i o adsorpcijskom kapacitetu adsorbensa. Ovaj pokazatelj i stupanj oštećenja hrane za životinje određuju brzinu unošenja adsorbenta u hranu za životinje. Bitna svojstva adsorbenata su sposobnost djelovanja u širokom pH rasponu i ireverzibilnost vezanja mikotoksina. Poznato je da se mikotoksini mogu adsorbirati na adsorbensu u želucu i desorbirati u alkalnoj sredini crijeva. Kao rezultat toga, učinkovitost takvog adsorbensa bit će upitna. Neki adsorbenti također imaju sposobnost adsorpcije hranjivih tvari, vitamina i mikroelemenata.

Postoje poteškoće u procjeni učinkovitosti adsorbenata, što uvelike komplicira njihov odabir i dobivanje objektivnih rezultata. Većina klasičnih in vitro metoda ne može se niti približiti stvarnom stanju gastrointestinalnog trakta.

Pokusi in vivo su previše složeni i teško ih je ponoviti.

Stoga se nastavlja potraga za modelima koji bi omogućili reproduciranje uvjeta koji su što bliži prirodi i omogućili dobivanje objektivnijih rezultata.

Većina vodećih toksikologa vjeruje da je učinkovita kontrola mikotoksina moguća korištenjem samo nekoliko komplementarnih načina za njihovu eliminaciju iz hrane za životinje, koji imaju različite mehanizme djelovanja i usmjereni su protiv različitih skupina toksina. Istraživanja u ovom području su vrlo intenzivna. Potraga za optimalnim anorganskim i organskim adsorbensima se nastavlja.

Trenutno su stvoreni hidratizirani natrij, kalcij, aluminosilikati, koji su prepoznati kao najbolji od anorganskih adsorbenata. To su dokazale laboratorijske i proizvodne studije mnogih neovisnih znanstvenih centara.

Novi smjer je neutralizacija mikotoksina. Neutralizacija toksičnog djelovanja mikotoksina enzimima prirodan je način borbe mikroorganizama za opstanak. Brojna istraživanja pokazala su da je izvrstan za neutralizaciju mikotoksina u organizmu domaćih životinja i peradi.

Posebno odabrani enzimi modificiraju mikotoksine u sigurne tvari djelujući na dio molekule koji je odgovoran za toksični učinak. Ovaj pristup je posebno važan i, možda, jedini učinkovit za nepolarne mikotoksine, koji praktički nisu vezani adsorbentima (trihoteceni, zearalenon, okratoksini).

4. MIKROBIOLOŠKA ANALIZA HRANE

Mitrošenkova A.E. Volga State Socio-Humanitarian Academy Samara, Rusija EKOLOŠKE I BIOLOŠKE KARAKTERISTIKE...»

„Program discipline „Biologija“ Autori: prof. G.N. Ogureeva, prof. V.M. Galušin, prof. A.V. Bobrov Ciljevi svladavanja discipline su: stjecanje temeljnih znanja o organizaciji živih organizama i značajkama njihova funkcioniranja; primi...»

"Napomene uz radne programe disciplina glavnog stručnog obrazovnog programa visokog obrazovanja u smjeru pripreme 03.03.02 Fizika s usmjerenjem (profilom)" Fizika kondenziranog stanja tvari "B1.B.1 Strani jezik Ovaj disciplina..."

"Ja. Anotacija Predmet "Fiziologija biljaka" jedna je od temeljnih bioloških disciplina. Proučavanje fiziologije biljaka danas poprima sve više teoretskog i praktičnog značaja zbog golemih uspjeha molekularne ... " UDC 81`27 POLITIČKA LINGVISTIKA: ZNANOST - ZNANSTVENI ... " IONTS " Ekologija i upravljanje prirodom " Biološki fakultet ekologije Katedra za MORFOLOGIJU I ANATOMIJU VIŠIH BILJA Pitanja...» «Saratovsko državno agrarno sveučilište nazvano po N. I. Vavilovu» FIZIOLOGIJA kratki tečaj predavanja za studente poslijediplomskog studija 3. godine Smjer pripreme 06.06.01. Biološke znanosti Pr... "suvremene "velike" ekologije - njezine teorije, zakonitosti, pravila ..." UDK 633.491:631.535 / 544.43 UTJECAJ BILJAKA DOMAĆINA VIRUSA KRUMPIRA I LETOVA LISNIH FINA - PRIJENOSNIKA VIRUSA NA DJELOVANJE KRUMPIR U IZVORNOM SJEMENARSTVU Ryabtseva T.V., Kulikova V.I. GNU Kemerovo Istraživački institut za poljoprivredu Ruske poljoprivredne akademije, Kemerovo ... "

"jedan. Obrazloženje Program prijemnog ispita Program prijemnog ispita uključuje materijale za provjeru znanja i kompetencija onih koji upisuju magistarski studij smjera osposobljavanja 49.04.01 Tjelesna kultura "Medicinska i biološka podrška tjelesnoj kulturi ..."

„Prilikom izrade programa akademske discipline „Medicinsko-biološki temelji sigurnosti“ kao osnova uzeto je sljedeće: Savezni državni obrazovni standard visokog stručnog obrazovanja u smjeru osposobljavanja prvostupnika 18. ožujka 02. (241000,62) „Energija i procesi koji štede resurse u kemijskoj tehnologiji, petrokemiji i biotehnologiji”, odobrilo Ministarstvo obrazovanja i znanosti 24. siječnja .. .”

UDK 542. 952. 6. 691. 175. 5/8 KINETIKA REAKCIJE HIDROKARBOMETOKSILACIJE OKTENA-1 NA Pd(OAc)2 – PPh3 – p-TsOH KATALIZA SUSTAVA © 2013 N. T. Sevostyanova1, S. A. Batashev2, A M. Demerliy3 , V. A. Averjanov...»

2017 www.site - "Besplatna elektronička knjižnica - razna građa"

Materijali ove stranice objavljeni su za pregled, sva prava pripadaju njihovim autorima.
Ako se ne slažete da se vaš materijal objavi na ovoj stranici, pišite nam, mi ćemo ga ukloniti u roku od 1-2 radna dana.
KATEGORIJE
Karijes
Implantacija
tatarski
Grlo
Usne

POPULARNI ČLANCI
Nadjev od ptičje trešnje za tortu

Nadjev od ptičje trešnje za tortu
Kako provjeriti kvalitetu cementa u nekoliko minuta?

Kako provjeriti kvalitetu cementa u nekoliko minuta?
Jednostavan izlaz iz teške situacije: kako napraviti grijanje iz bojlera vlastitim rukama?

Jednostavan izlaz iz teške situacije: kako napraviti grijanje iz bojlera vlastitim rukama?
Kako i kako lijepiti pjenu na različite površine. Prednosti proizvoda u prahu

Kako i kako lijepiti pjenu na različite površine. Prednosti proizvoda u prahu
Kako dodati postotke u Excelu Dodajte postotke formuli iznosa

Kako dodati postotke u Excelu Dodajte postotke formuli iznosa

2022 "gcchili.ru" - O zubima. Implantacija. Zubni kamenac. Grlo